一种生产2’-岩藻糖基乳糖的大肠杆菌及其应用
文献发布时间:2023-06-19 10:16:30
技术领域
本发明涉及一种生产2’-岩藻糖基乳糖的重组大肠杆菌及其应用,属于微生物代谢工程领域。
背景技术
母乳中最重要的生物活性成分之一是人乳寡糖(HMOs,Human MilkOligosaccharides),HMOs结构非常复杂,根据质谱分析,推测HMOs的种类可达数千种。HMOs可通过选择性地刺激特定微生物的生长,特别是双歧杆菌等益生菌,来塑造肠道微生物菌群,有效地保障了胃肠道和免疫系统的发育和健康。另外,随着人体肠道微生物菌群研究的不断深入,充分证明了HMOs不仅能促进婴儿有益微生物菌群的形成,还能改善成年人的肠道微生物菌群。因此婴幼儿配方奶粉和功能性食品对于HMOs的需求量将不断增加。
岩藻糖基化寡糖,尤其是其中的2’-岩藻糖基乳糖,是人乳寡糖中的主要成分,且结构相对简单,具有重要价值。HMOs结构复杂,分离提取困难,利用微生物合成2’-岩藻糖基乳糖具有广阔前景。
目前微生物生产2’-岩藻糖基乳糖主要有两条代谢途径,分别是从头合成途径和补救途径(图1)。从头合成途径主要是从胞内代谢物6-磷酸果糖开始,通过磷酸甘露糖异构酶(ManA)、磷酸甘露糖变位酶(ManB),甘露糖-1-磷酸鸟嘌呤基转移酶(ManC),GDP-甘露糖-6-脱氢酶(Gmd)和GDP-岩藻糖合成酶(WcaG)的顺序作用合成GDP-岩藻糖,进一步经过2’-岩藻糖基乳糖合成酶(FutC)的作用,以GDP-岩藻糖和乳糖为底物,合成2’-岩藻糖基乳糖。补救途径是经过岩藻糖1-激酶/GDP-岩藻糖焦磷酸化酶(Fkp)的作用,将岩藻糖转化为GDP-岩藻糖,进一步经过FutC的作用,以GDP-岩藻糖和乳糖为底物,合成2’-岩藻糖基乳糖。为了进一步提高2’-岩藻糖基乳糖,可以敲除乳糖降解相关的β-半乳糖苷酶LacZ,GDP-岩藻糖降解相关的UDP-葡萄糖脂质载体转移酶WcaJ,岩藻糖降解相关酶FucIK,过表达GDP-岩藻糖合成途径的调控蛋白RcsA,过表达β-半乳糖苷透性酶LacY,以及增强NADPH,GTP的供应等。
大肠杆菌遗传背景清晰,基因操作方便,是工业生物制造最常用的菌株。在大肠杆菌中,敲除lacZ,用质粒大量过表达所有从头合成途径关键酶ManA,manC,manB,Gmd,WcaG,FutC,LacY,2’-岩藻糖基乳糖摇瓶产量为0.83g/L,(Huang, D., et al. (2017). "Metabolic engineering of
2’-岩藻糖基乳糖补救合成途径需要以高价值的岩藻糖为底物,生产成本高,基本不具有产业化应用价值。虽然构建2’-岩藻糖基乳糖从头合成途径,能够生产2’-岩藻糖基乳糖,但是依然存在途径不畅通、中间代谢物积累等问题,导致2’-岩藻糖基乳糖生产水平较低。
发明内容
为了解决上述技术问题,本发明将对2’-岩藻糖基乳糖从头合成途径关键酶进行不同表达水平的调控,以提高途径效率,提高2’-岩藻糖基乳糖生产水平。
本发明提供了一种生产2’-岩藻糖基乳糖的重组菌株,通过调控2’-岩藻糖基乳糖从头合成途径酶的表达,包括,在宿主细胞基因组上插入单拷贝磷酸甘露糖异构酶(ManA)、磷酸甘露糖变位酶(ManB),GDP-甘露糖-4,6-脱水酶(Gmd)和GDP-岩藻糖合成酶(WcaG),在质粒上多拷贝过表达甘露糖-1-磷酸鸟嘌呤基转移酶(ManC)和2’-岩藻糖基乳糖合成酶(FutC),敲除β-半乳糖苷酶(LacZ),过表达β-半乳糖苷透性酶(LacY),使得菌株能够大量积累2’-岩藻糖基乳糖;
进一步在质粒上多拷贝过表达糖外排转运蛋白SetA,能够大幅提高2’-岩藻糖基乳糖的生产水平;
进一步地,所述宿主细胞可以是大肠杆菌BL21(DE3)、大肠杆菌K12 MG1655或大肠杆菌JM109;
优选地,所述宿主细胞为大肠杆菌K12 MG1655;
进一步地,所述质粒可以是pTrc99a、pSB4K5、pET28a或pET22b;
进一步地,所述多拷贝具体为使用质粒pTrc99a(拷贝数约为20),pSB4K5(拷贝数约为5);
进一步地,磷酸甘露糖异构酶(ManA)、磷酸甘露糖变位酶(ManB)、GDP-甘露糖-4,6-脱水酶(Gmd)、GDP-岩藻糖合成酶(WcaG)和β-半乳糖苷透性酶(LacY)通过Ptrc启动子进行过表达,甘露糖-1-磷酸鸟嘌呤基转移酶(ManC)通过阿拉伯糖诱导型启动子Para过表达;
所述磷酸甘露糖异构酶(ManA)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;
所述磷酸甘露糖变位酶(ManB)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述GDP-甘露糖-4,6-脱水酶(Gmd)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
所述GDP-岩藻糖合成酶(WcaG)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示;
所述甘露糖-1-磷酸鸟嘌呤基转移酶(ManC)的编码基因的核苷酸序列如SEQ IDNO.5所示;
所述2’-岩藻糖基乳糖合成酶(FutC)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示;
所述β-半乳糖苷酶(LacZ)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.7所示;
所述β-半乳糖苷透性酶(LacY)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示;
所述糖外排转运蛋白(SetA)的编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示。
本发明还提供上述重组菌在生产2’-岩藻糖基乳糖中的应用,特别是发酵生产2’-岩藻糖基乳糖的方法。具体如下:
发酵温度为36-38℃,发酵时间24-48h,摇床转速200-220r/min,接种量1.8%-2%;
发酵培养基为:2g/LKH
微量元素溶液组成为:10g/LFeSO
有益效果:
本发明提供的2’-岩藻糖基乳糖从头合成途径关键酶表达水平的调控策略,通过将不同的酶分别进行基因组过表达或者质粒过表达的调控,能够大幅提高代谢通路的效率,利用相关策略构建的基因工程菌株,与较为接近的现有技术生产水平(约0.8g/L)相比提高3倍以上,进一步过表达SetA后,提高13倍以上,为2’-岩藻糖基乳糖的工业生产奠定了基础。
附图说明
图1:2’-岩藻糖基乳糖生产的从头合成途径和补救合成途径
其中,PGI,磷酸葡萄糖异构酶;ManA,甘露糖异构酶;ManB,磷酸甘露糖变位酶;ManC,甘露糖-1-磷酸鸟嘌呤基转移酶;Gmd,GDP-甘露糖-4,6-脱水酶;WcaG,GDP-岩藻糖合成酶;Fkp,岩藻糖1-激酶/GDP-岩藻糖焦磷酸化酶;FutC,2’-岩藻糖基乳糖合成酶;SetA,糖外排转运蛋白;LacZ,β-半乳糖苷酶;LacY,β-半乳糖苷透性酶。
图2:重组质粒pTrc99a
图3:重组质粒pTrc99a-
图4:重组质粒pTrc99a
图5:重组质粒pKD46
图6:重组质粒pTrc99a-
图7:重组质粒pSB4K5-
具体实施方式
下面通过具体的实施方案叙述本发明。除非特别说明,本发明中所用的技术手段均为本领域技术人员所公知的方法。另外,实施方案应理解为说明性的,而非限制本发明的范围,本发明的实质和范围仅由权利要求书所限定。对于本领域技术人员而言,在不背离本发明实质和范围的前提下,对这些实施方案中的物料成分和用量进行的各种改变或改动也属于本发明的保护范围。
本发明实施例中所述的2’-岩藻糖基乳糖测定方法为HPLC法,具体为:
色谱柱:Carbohydrate ES 5u 250mm*4.6mm;检测器:蒸发光检测器;流动相:70%乙腈(乙腈:水);流速:0.8mL/min,柱温:30℃;进样量:5µL。
本发明实施例采用的主要培养基如下:
LB培养基(1L):Tryptone(胰蛋白胨)10g,Yeast Extract(酵母提取物)5g,NaCl(氯化钠)5g。
发酵培养基:2g/LKH
微量元素溶液组成为:10g/LFeSO
下面通过实施例对本发明做进一步说明。
实施例1:菌株
以大肠杆菌MG1655为原始菌株,敲除lac操纵子序列中Plac启动子序列以及
构建此菌株使用方法为λRed重组。主要是构建两步同源重组片段,以pKD46(GenBank:MF287367)作为同源重组质粒,进行基因的敲除及整合。第一步同源重组片段包含上下游同源臂、氯霉素抗性基因和
1、第一步同源重组片段
2、制备大肠杆菌MG1655化学转化感受态细胞并将质粒pKD46化转其中。
3、第一步同源重组。将构建好的第一次重组片段
4、第二步同源重组片段
5、第二步同源重组。
(1)第一次同源重组鉴定正确的重组子制备成电转化感受态细胞。(2)将第二步同源重组片段
第二步同源重组中所需质粒pTrc99a
表1:构建基因组过表达
实施例2:菌株W1△
为过表达
第二步同源重组中所需质粒pTrc99a-
表2:构建基因组过表达
实施例3:质粒pTrc99a-
为高拷贝过表达
pTrc99a-
表3:构建质粒pTrc99a-
pKD46-
表4:构建质粒pKD46
以上述构建的质粒pTrc99a–
表5:构建质粒pTrc99a-
实施例4:质粒pSB4K5-
2’-岩藻糖基乳糖的外排也是生产的限制因素,因此需过表达2’-岩藻糖基乳糖外排蛋白。选择来自大肠杆菌的外排蛋白基因
质粒构建过程如下:以pSB4K5-I52002(GenBank:EU496099)质粒为模板,使用引物psb4K5-1/psb4K5-2,PCR扩增得到线性pSB4K5载体。以野生型
表6:构建质粒pSB4K5-
实施例5:2’-岩藻糖基乳糖生产菌株构建
为实现2’-岩藻糖基乳糖的初步生产,需构建基因工程菌株大肠杆菌W2(pTrc99a
实施例6:2’-岩藻糖基乳糖生产菌株发酵验证
构建2’-岩藻糖基乳糖生产菌株后,对其进行发酵培养,使用HPLC进行2’-岩藻糖基乳糖的检测分析。发酵,检测过程如下:
重组大肠杆菌W2(pTrc99a
(1)挑取获得的基因工程菌株W2(pTrc99a
(2)将菌液转接到40mL发酵培养基中(500ml三角瓶),接种量为2%,加入氨苄青霉素(终浓度50μg/mL)。37℃,220rpm,培养24h后取样5ml,继续培养48h后取样5ml检测2’-岩藻糖基乳糖产量。
(3)收集大肠杆菌发酵液后,利用超声破碎细胞仪破碎细胞,12000r/min离心10min,收集上清,煮沸十分钟,离心10分钟,取样进行HPLC检测分析,测2’-岩藻糖基乳糖的产量,结果为三次平行取平均值。
基因工程菌株大肠杆菌W2(pTrc99a
(1)挑取获得的基因工程菌株W2(pTrc99a
(2)将菌液转接到40mL发酵培养基中(500ml三角瓶),接种量为2%,加入终浓度为50μg/mL的氨苄青霉素和50μg/mL的卡那霉素,37℃,220rpm,培养24h和48h后分别取样5ml检测2’-岩藻糖基乳糖产量。
(3)收集大肠杆菌发酵液后,利用超声破碎细胞仪破碎细胞,12000r/min离心10min,收集上清,煮沸十分钟,离心10分钟,取样进行HPLC检测分析,测2’-岩藻糖基乳糖的产量,结果为三次平行取平均值。
表7 2’-岩藻糖基乳糖生产
本发明的核心思想是将ManA,ManB,Gmd,WcaG维持在相对较低的过表达水平,将FutC和ManC维持在相对较高的过表达水平,从而可以调控从头合成途径发挥更高的效率。除了利用本发明中提供的实施例外,其它常规手段,例如通过在基因组上多拷贝过表达FutC和ManC,或者利用较弱启动子过表达ManA,manB,Gmd和WcaG,利用较强启动子过表达FutC和ManC,也能够起到调控途径酶表达水平的作用。
序列表
<110> 天津科技大学
<120> 一种生产2'-岩藻糖基乳糖的大肠杆菌及其应用
<130> 1
<160> 9
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1176
<212> DNA
<213> 大肠杆菌MG1655()
<400> 1
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<212> DNA
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<212> DNA
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<210> 5
<211> 1437
<212> DNA
<213> 大肠杆菌mg1655()
<400> 5
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ccgctttccc gcgtacttta tcccaagcag tttttatgcc tgaaaggcga tctcaccatg 120
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<210> 6
<211> 906
<212> DNA
<213> 幽门螺杆菌()
<400> 6
atggctttta aagtggtgca aatttgcgga gggcttggga atcaaatgtt tcaatacgct 60
ttcgctaaaa gtttgcaaaa acactctaat acgcctgtgc tgttagatat tacttctttt 120
gattggagca ataggaaaat gcaattagag cttttcccta ttgatttacc ctatgcgaat 180
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ttaaagccaa gccgcttgac ttatttttat ggctattttc aagatccacg atattttgat 360
gctatatccc ctttaatcaa gcaaactttc accctacccc acccaccccc tcccgaaaat 420
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<213> 大肠杆菌MG1655()
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- 一种生产2’-岩藻糖基乳糖的大肠杆菌及其应用
- 一种α-1,3-岩藻糖基转移酶突变体及利用该突变体制备3-岩藻糖基乳糖的应用