一种基于HP-SAEW并联技术的天麻鲜切片的加工方法

技术领域

本发明涉及食品加工技术领域，尤其涉及一种基于HP-SAEW并联技术的天麻鲜切片的加工方法。

背景技术

鲜切果蔬又称最小加工果蔬，其生产过程一般要经过分级、清洗、切分、包装、杀菌等工序。虽然其本来的形状发生了变化，但还能保持新鲜度的产品都为鲜切产品，可直接供消费者食用。并且具有天然、营养、方便等特点的鲜切果蔬能满足人们对快节奏、绿色、健康的生活追求，所以市场占有率逐渐增加。这些特点促进了全球范围内对鲜切水果和蔬菜的投资。鲜切果蔬市场有良好的发展前景。但是在加工过程中，不可避免的机械操作(削皮、切片、切丁等)损害了果蔬组织，使其相对未处理的产品来说，生理生化代谢存在加剧、质地软化、营养及水分流失、组织褐变、易受微生物侵染等问题，影响了产品的保质期。近几年来，鲜切果蔬常常与大肠杆菌O157:H7和沙门氏菌等造成的食源性疾病联系起来。研究表明，在未冷藏或10℃以上的储存环境下，大肠杆菌O157:H7、沙门氏菌和单增细胞李斯特菌能在水果组织中生长，例如苹果。而保证鲜切果蔬的营养质量、延长保质期一直是鲜切农产品的主要关键点。

天麻(Gastrodia elata)为兰科天麻属寄生草本植物，天麻中含有丰富的酚类物质、天麻素、天麻苷元、天麻多糖、蛋白质等物质，2020年，天麻被列入药食同源生产经营试点工作，这意味着鲜切天麻的需求将越来越多。鲜天麻具有口感好、营养成分高、多种保健功能等特点，鲜天麻作为食品的销售和食用方式也越来越多，越来越受人们的欢迎。目前，天麻食用方式有3种：一是出土清洗后数日内鲜食；二是用保鲜剂或其他方式处理后真空包装，开袋后食用；三是通过蒸发、水煮或热炮制法对天麻进行预处理后烘干食用，传统药用一般采用此种方式。因天麻营养丰富，不耐贮藏，出土后的天麻如果需要鲜食，则须在一定时日内食用，否则容易腐烂。而天麻在鲜切贮运过程中会产生褐变、水分及营养成分流失、微生物污染等主要问题，影响其商品价值。因此，需找到一种有效降低鲜切天麻加工过程中微生物的侵染，以维持产品的质量，延长其保质期，减少营养损失的处理方法。

发明内容

本发明的目的在于提供一种基于HP-SAEW并联技术的天麻鲜切片的加工方法。本发明通过HP、SAEW技术组合并联处理天麻鲜切片，增强了杀菌效果，抑制了天麻鲜切片在贮藏过程中的品质衰败，并且煮制后对天麻鲜切片食用品质影响不明显，实现既能缓解品质衰变和成分降解，又对食用品质影响不显著，提高了天麻鲜切片的经济效益。

为了实现上述发明目的，本发明提供了以下技术方案：

本发明提供了一种基于HP-SAEW并联技术的天麻鲜切片的加工方法，将天麻置于微酸性电解水中，进行超高压处理，处理结束后，得到所述天麻鲜切片。

优选的，所述天麻的厚度为4～6mm，直径为1～3cm。

优选的，所述天麻与微酸性电解水的料液比为1：1～5g/mL。

优选的，所述微酸性电解水的有效氯质量浓度为24～49mg/L，pH为5.0～6.5。

优选的，所述进行超高压处理前，将微酸性电解水中的空气排尽，所述超高压处理在密封条件下进行。

优选的，所述超高压处理的压强为50～200MPa，保压时间为7.5～10min。

优选的，所述处理结束后，加入硫代硫酸钠终止反应。

优选的，所述硫代硫酸钠的浓度为400～600g/L，所述硫代硫酸钠与所述微酸性电解水的体积比为(80～120)：1。

本发明还提供了一种上述加工方法得到的天麻鲜切片。

本发明提供了一种基于HP-SAEW并联技术的天麻鲜切片的加工方法。本发明通过HP、SAEW技术组合并联处理天麻鲜切片，利用HP和SAEW的协同作用，增强杀菌效果，且可以抑制天麻鲜切片在贮藏过程中品质的衰败和有效成分的降解，煮制后对天麻鲜切片食用品质影响不大。表明，使用本发明的方法，在确保微生物控制前提下，降低加工参数，实现既能缓解品质衰变和成分降解，又对食用品质影响不显著，提高了天麻鲜切片的经济效益。

附图说明

图1为实施例1中HP-SAEW并联技术与单一HP技术加工对天麻鲜切片的杀菌效果。

图2为实施例2中HP-SAEW并联技术与单一SAEW技术加工对天麻鲜切片的杀菌效果。

图3为实施例3中HP-SAEW并联技术不同料液比下协同项的致死率，其中，A为料液比1：1，B为料液比1：3，C为料液比1：5。

图4为实施例3中有效氯浓度和压强对大肠杆菌活菌数影响的响应曲线图。

图5为实施例3中有效氯浓度和压强对大肠杆菌活菌数影响的等高线图。

图6为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的褐变度变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图7为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的硬度变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图8为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的嫩度变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图9为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片样品表面的菌落总数变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图10为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的腐烂指数变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图11为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的失重率变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图12为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的天麻多糖含量变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图13为试验例1中室温和37℃试验条件下，不同处理条件下的天麻鲜切片的VC含量变化情况；其中，A为室温条件，B为37℃条件。

图14为试验例1中不同处理条件下的天麻鲜切片煮制后的硬度变化情况。

图15为试验例1中不同处理条件下的天麻鲜切片煮制后的嫩度变化情况。

图16为试验例1中不同处理条件下的天麻鲜切片煮制后的色差变化情况。

图17为试验例1中不同处理条件下的天麻鲜切片煮制后的糊化度变化情况。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明，但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。

实施例1

本实施例通过添加外源微生物，验证HP-SAEW并联技术与单一HP技术加工对天麻鲜切片的杀菌效果。具体操作如下：

1.菌悬液的制备

将Escherichia coli(E.coli，ATCC 25922)冻干粉活化，置于37℃恒温振荡器中培养24h后，放于4℃冰箱中保存。菌种每1周转接到新的培养基，以保持其活性。每次使用菌种时用接种环取一环菌液接种于新的肉汤培养中，置于恒温振荡器，在37℃下培养24h，连续重复3次，所得菌液中活菌数量达到了10

2.外源微生物接种

选取无病虫害的鲜天麻，用自来水洗净并擦干后进行削皮切片，切成厚度为5mm，直径为2cm的切片天麻。称取质量为5.0±0.5g的切片置于培养皿中，正反面紫外照射杀菌各15min。将天麻切片放入10mL含菌浓度为10

3.微酸性电解水的制备

取浓度为6％的HCl溶液，经HD-240L SAEW生成机制成有效氯浓度(ACC)分别为24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L的微酸性电解水。

4.天麻切片加工处理

在对接种后的天麻切片进行加工处理前，测定天麻切片表面的大肠杆菌活菌数，经检测，活菌数为5.37lg CFU/g。将天麻切片进行以下处理：

实验组1(HP-SAEW并联技术处理组)：将接种好的天麻切片(5g±0.5g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有微酸性电解水(有效氯浓度分别为24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L)的11cm*16cm铝箔袋中，排尽空气，热封后进行超高压处理(保压时间分别为2.5、5、7.5、10min，压强为0、50、100、150、200MPa)，处理结束后加入500g/L的硫代硫酸钠，硫代硫酸钠和微酸性电解水的体积比为100:1，从而终止反应，得到天麻鲜切片。

对照组1(单一HP技术处理组)：将接种好的天麻切片按照料液比1:3g/mL，放入含有无菌水(有效氯浓度为0mg/L)中，排尽空气，热封后进行超高压处理(保压时间分别为2.5、5、7.5、10min，压强为0、50、100、150、200MPa)，处理结束后得到天麻鲜切片。

反应结束后，测定各处理条件下的天麻鲜切片表面残留大肠杆菌活菌数，检测结果如图1所示。

从图1可以看出，在同样的料液比、压强、有效氯浓度下，各处理条件下的天麻鲜切片表面的活菌数随着处理时间的延长均逐渐减少；在同样的压强下，对照组1采用单一HP技术处理，天麻鲜切片表面残留的活菌数皆高于实验组，表明，HP-SAEW并联杀菌处理比单一HP技术处理的杀菌效果强。

随着有效氯浓度升高，杀菌效果逐渐增强，当处理10min后，50MPa压强协同有效氯浓度从24mg/L上升至49mg/L，天麻鲜切片表面活菌数从最初的5.37lg CFU/g依次降为3.35、3.53、3.28、3.23lg CFU/g；100MPa压强并联时，鲜切片表面活菌数依次降为3.45、3.48、3.4、3.29lg CFU/g；150MPa压强并联时，鲜切片表面活菌数依次降为3.71、3.32、3.32、3.26lg CFU/g；200MPa压强并联时，活菌数降为2.29、2.4、2.28、2.26lg CFU/g。

实施例2

本实施例通过添加外源微生物，验证HP-SAEW并联技术与单一SAEW技术加工对天麻鲜切片的杀菌效果。具体操作如下：

1.菌悬液的制备

将Escherichia coli(E.coli，ATCC 25922)冻干粉活化，置于37℃恒温振荡器中培养24h后，放于4℃冰箱中保存。菌种每1周转接到新的培养基，以保持其活性。每次使用菌种时用接种环取一环菌液接种于新的肉汤培养中，置于恒温振荡器，在37℃下培养24h，连续重复3次，所得菌液中活菌数量达到了10

2.外源微生物接种

选取无病虫害的鲜天麻，用自来水洗净并擦干后进行削皮切片，切成厚度为5mm，直径为2cm的切片天麻。称取质量为5.0±0.5g的切片置于培养皿中，正反面紫外照射杀菌各15min。将天麻切片放入10mL含菌浓度为10

3.微酸性电解水的制备

取浓度为6％的HCl溶液，经HD-240L SAEW生成机制成有效氯浓度(ACC)分别为24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L的微酸性电解水。

4.天麻切片加工处理

在对接种后的天麻切片进行加工处理前，测定天麻切片表面的大肠杆菌活菌数，经检测，活菌数为5.37lg CFU/g。将天麻切片进行以下处理：

实验组2(HP-SAEW并联技术处理组)：将接种好的天麻切片(5g±0.5g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有微酸性电解水(有效氯浓度分别为24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L)的11cm*16cm铝箔袋中，排尽空气，热封后进行超高压处理(保压时间分别为2.5、5、7.5、10min，压强为0、50、100、150、200MPa)，处理结束后加入500g/L的硫代硫酸钠，硫代硫酸钠和微酸性电解水的体积比为100:1，从而终止反应，得到天麻鲜切片。

对照组2(单一SAEW技术处理组)：将接种好的天麻切片按照料液比1:3g/mL，放入含有微酸性电解水(有效氯浓度分别为24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L)的11cm*16cm铝箔袋中，分别浸泡2.5、5、7.5、10min，用500g/L的硫代硫酸钠终止反应，得到天麻鲜切片。

反应结束后，测定各处理条件下的天麻鲜切片表面残留大肠杆菌活菌数，检测结果如图2所示。

从图2可以看出，在同样的料液比、压强、有效氯浓度下，各处理条件下的天麻鲜切片表面的活菌数随着处理时间的延长均逐渐减少；在同样的有效氯浓度下，对照组2采用单一SAEW技术处理，天麻鲜切片表面残留的活菌数皆高于实验组，表明，HP-SAEW并联杀菌处理比单一SAEW技术处理的杀菌效果强。

随着协同压强升高，杀菌效果逐渐增强，当处理10min后，24mg/LACC协同HP压强从50MPa上升至200MPa时，天麻鲜切片表面活菌数从最初的5.37lg CFU/g依次降为4.03、3.45、3.39、2.29lg CFU/g；30mg/LACC并联时，鲜切片表面活菌数依次降为3.53、3.48、3.32、2.74lg CFU/g；38mg/LACC并联时，鲜切片表面活菌数分别减少3.28、3.4、3.32、2.28lg CFU/g；49mg/LACC并联时，活菌数分别减少了3.23、3.29、3.26、2.26lg CFU/g。

实施例3

本实施例对HP-SAEW并联处理过程中大肠杆菌数量进行了分析，验证了SAEW与HP并联杀菌过程中的增强作用，增强作用以协同项致死率表示，采用如下公式计算：

式中：I

式中：I

式中：I

ΔI＝I

式中：△I为协同项。

当△I>0时，说明SAEW与HP协同处理具有增强性，即并联处理效果优于SAEW和HP单独作用时效果之和；当△I＝0，说明SAEW与HP协同处理具有加和性，即协同处理效果等于SAEW和HP单独作用时效果之和；当△I<0时，说明SAEW与HP协同处理具有反协同性，即协同处理效果弱于SAEW和HP单独作用时的效果之和。

以有效氯浓度为49mg/L并联不同压强、不同料液比下的实验结果通过计算，得到并联作用下协同项的致死率(△I)。结果如图3所示。由图3可看出，在料液比为1:1g/mL条件下，SAEW与50、100、150和200MPa并联处理时，在50、200MPa杀菌2.5、5min过程中协同项的致死率大于0，100、150MPa杀菌2.5min过程中增强项致死率也大于0，表明杀菌效果强于SAEW和50、100、150、200MPa单独作用时的效果之和。杀菌7.5-10min过程中，协同压强50-200MPa时，增强效果逐渐降低，致死率小于0，表明协同效果弱于SAEW和HP单独作用时的效果之和。料液比1:3g/mL的结果变化趋势与1:1g/mL料液比的一致。在料液比为1:5g/mL条件下，SAEW与四个压强并联处理时，在150MPa杀菌2.5、5min过程中协同项的致死率大于0，50、100、200MPa杀菌2.5min过程中协同项致死率大于0，表明杀菌效果优于SAEW和HP单独作用时的效果之和。协同压强杀菌处理时，7.5、10min时间处理，致死率均小于0，说明杀菌效果弱于SAEW和HP单独作用时的效果之和。

将协同项作为响应值进行响应面分析得到二次多元回归方程：

协同项＝-1032.30401+3.58231*ACC+2.43567*压强+204.60979*时间+96.10754*料液比+0.039600*ACC*压强-0.010526*ACC*时间-0.28947*ACC*料液比-0.32000*压强*时间+0.16500*压强*料液比-6.25000*时间*料液比-0.10790*ACC

根据回归模型作出相应的响应面和等高线分别如图4和图5，由图4和图5分析可知，压强和ACC交互作用对大肠杆菌影响的等高线图为接近椭圆，说明两者有交互作用。当压强固定时，随着ACC的增加，协同项逐渐增大；ACC固定时，随着压强的增加，协同项逐渐也逐渐增大。

试验例1

分别设置未处理组、SAEW处理组、HP处理组和HP-SAEW并联组，检测不同处理条件对天麻鲜切片贮藏品质的影响。具体操作如下：

未处理组：选取无病虫害的鲜天麻，用自来水洗净并擦干后进行削皮切片，切成厚度为5mm，直径为2cm的天麻切片。将天麻切片(10g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有无菌水的11cm*16cm铝箔袋中，进行热封。

SAEW处理组：将天麻切片(10g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有有效氯浓度为24mg/L的微酸性电解水的11cm*16cm铝箔袋中，浸泡10min，用500g/L的硫代硫酸钠终止反应。

HP处理组：将天麻切片(10g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有无菌水的11cm*16cm铝箔袋中，排尽空气，热封后进行超高压处理。保压时间为10min，压强为200MPa。

HP-SAEW并联组：将天麻切片(10g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有有效氯浓度为24mg/L微酸性电解水的铝箔袋中，排尽空气，热封后进行超高压处理。保压时间为10min，压强为200MPa。用500g/L的硫代硫酸钠终止反应。

以室温为对照条件，37℃为加速控温试验条件，储放8d，每隔1天测定天麻鲜切片的褐变度、硬度、嫩度、菌落总数、腐烂指数、失重率、天麻多糖含量以及VC含量，检测结果分别如图6-13所示。其中，各图中A图为室温条件，B图为37℃加速条件。

从图6可以看出，天麻鲜切片在不同条件贮藏过程中，各组的褐变度都呈现先下降后上升的趋势，未处理组整体上升程度明显高于处理组，HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片褐变程度低于其他组。在室温下贮藏第4d时，HP-SAEW并联处理褐变度最低为0.35，随着贮藏时间延长，褐变度逐渐上升，第8d时褐变度低于未处理组，差异显著；37℃加速控温条件下贮藏第0-2天，褐变度先下降，随着贮藏期延长，褐变度上升，第8d时低于未处理组，差异显著。说明HP-SAEW并联处理对天麻鲜切片褐变有抑制作用。

从图7可以看出，在室温和37℃加速试验条件下，在天麻贮藏期间，HP-SAEW并联处理后的天麻鲜切片硬度高于其他处理组，整体呈下降的趋势，HP处理组、SAEW处理组两组间的硬度值变化范围较小，且随着贮藏期的延长，硬度值趋于一致。天麻鲜切片的初始硬度为25203.51g；室温储放8d时，并联处理的天麻鲜切片硬度降为16444.97g，SAEW处理组的硬度降为14761.22g，HP处理组的硬度降为15123.86g，未处理组的天麻鲜切片硬度降为14192.40g，与HP-SAEW并联组相比差异不显著。37℃加速控温储放8d时，并联处理的天麻鲜切片硬度降为15026.47g，SAEW处理组的硬度降为16151.18g，HP处理组的硬度降为14604.02g；未处理组的天麻鲜切片硬度降为13200.40g与并联组相比差异显著。结果表明，与单一技术相比，HP-SAEW并联处理对天麻鲜切片硬度影响不明显，室温贮藏下HP-SAEW并联处理使贮藏期间鲜切天麻的硬度得到较好维持。

从图8可以看出，在室温和37℃加速控温试验条件下，贮藏期间，HP-SAEW并联处理后的天麻鲜切片的嫩度高于其他处理组，随时间的延长呈下降的趋势，而其他处理组的嫩度随着贮藏期的延长，嫩度值变化趋势一致。其中，天麻鲜切片的初始嫩度为4973.29g；室温储放8d时，HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片嫩度降为4226.91g，SAEW处理组的嫩度降为3271.27g，HP处理组的嫩度降为4068.24g，未处理组的天麻鲜切片嫩度降为3021.81g。37℃加速控温储放8d时，并联处理的天麻鲜切片嫩度降为3882.55g，SAEW处理组的嫩度降为3289.39g，HP处理组的嫩度降为3602.16g，未处理组的天麻鲜切片嫩度降为2937.55g；结果表明，与单一技术相比，HP-SAEW并联处理对天麻嫩度的影响不明显，起到了保持天麻鲜切片嫩度的作用。

从图9可以看出，在贮藏过程中，天麻鲜切片样品表面的菌落总数随着贮藏时间的延长而随之增加。贮藏8d时，室温和37℃加速条件下，未处理组菌落总数从4.26lg CFU/g分别增加到8.15、8.27lg CFU/g，SAEW处理组的天麻鲜切片菌落总数分别上升到5.05、5.59lgCFU/g，HP处理组的天麻鲜切片菌落总数分别从4.26lg CFU/g增加到5.55、5.73lg CFU/g；室温下HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片菌落总数2-4d未检出，第6d检出，贮藏第8d增加到1.93lg CFU/g，与单一技术相比差异显著；37℃加速条件下HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片菌落总数第2d未检出，第4d开始检出，第8d时增加到2.21lg CFU/g，与单一技术相比差异显著。结果表明，HP-SAEW并联处理可以有效抑制微生物的生长。

从图10可以看出，HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片随着贮藏时间的延长，并未出现腐烂，腐烂指数为0％，室温条件下贮藏，未处理组第4d开始出现腐烂，腐烂指数为1.7％，贮藏第8d时，SAEW处理组的天麻鲜切片出现腐烂，HP处理组和HP-SAEW并联处理还未出现腐烂；37℃加速控温条件下，未处理组第2天开始出现腐烂，腐烂指数从1.7％增加到5.0％；SAEW处理第4天开始出现腐烂，HP处理组和HP-SAEW并联处理并未出现腐烂。由此可知与单一技术相比，HP-SAEW并联处理可以更好的抑制天麻鲜切片的腐烂，延长贮藏期。

从图11可以看出，随着样品贮藏时间的增加，室温和37℃加速条件下天麻鲜切片的失重率整体呈上升的趋势。室温条件下储放8d时，SAEW处理组、HP处理组和未处理组失重率分别为4.33％、4.67％、6.74％；37℃加速条件下储放8天时，SAEW处理组、HP处理组和未处理组失重率分别为4.77％、4.73％、6.72％；两个条件下，HP-SAEW并联处理组失重率分别是3.90％、4.45％，与单一技术相比，差异不显著(P>0.05)，说明HP-SAEW并联处理对失重率影响不大；与未处理相比，差异显著(P<0.05)，表明并联处理有利于减缓天麻鲜切片质量损失，减少水分的散失和营养物的损耗。

从图12可以看出，两个贮藏条件下，贮藏时间的延长，天麻多糖含量逐渐降低。天麻鲜切片的初始多糖含量为16.08mg/g，从贮藏期第2d麻开始至贮藏期第8d，未处理组的天麻多糖含量明显低于处理组，贮藏期8d时，室温下，未处理组和SAEW处理、HP处理组、HP-SAEW并联处理的天麻多糖含量分别为11.88、12.05、12.27、12.38mg/g。37℃控温条件下，未处理组、SAEW处理和HP处理组、HP-SAEW并联处理的天麻多糖含量分别为11.39、12.66、12.13、12.76mg/g。结果表明：与单一技术相比，HP-SAEW并联处理能减缓天麻鲜切片的天麻多糖含量损失，多糖损失少。

从图13可以看出，随着贮藏时间的延长，天麻鲜切片的VC含量逐渐下降。天麻鲜切片的初始VC含量为5.28mg/100g，室温贮藏第8d时，SAEW处理组的VC含量为0.82mg/100g；HP处理组的VC含量为0.59mg/100g；并联处理组天麻鲜切片的VC含量为0.65mg/100g，而未处理组VC含量仅为0.47mg/100g。37℃贮藏第8d时，HP处理组、SAEW处理组的VC含量都为0.41mg/100g；HP-SAEW并联处理组天麻鲜切片的VC含量为0.47mg/100g，未处理组VC含量为0.35mg/100g。结果表明，与单一技术相比，室温贮藏下HP-SAEW并联处理的天麻鲜切片VC含量损失少。

综上，HP-SAEW并联加工处理较单一处理，对天麻鲜切片贮藏过程中的品质变化有抑制作用，起到保鲜效果。

试验例2

分别设置对照组、未处理组、SAEW处理组、HP处理组和HP-SAEW并联组，检测不同处理对天麻鲜切片煮制后食用品质的影响。具体操作如下：

未处理组：选取无病虫害的鲜天麻，用自来水洗净并擦干后进行削皮切片，切成厚度为5mm，直径为2cm的天麻切片。将天麻切片(10g/份)按照料液比1:3g/mL，放入含有无菌水的11cm*16cm铝箔袋中，进行热封。

HP-SAEW并联组：将天麻切片(10g/份)放入料液比1:3g/mL、有效氯浓度分别为0、24mg/L、30mg/L、38mg/L、49mg/L的微酸性电解水的铝箔袋中，排尽空气，热封后进行超高压处理。保压时间为10min，压强为200MPa。用500g/L的硫代硫酸钠终止反应。其中，有效氯浓度为0时，使用无菌水替换微酸性电解水。

按未处理组、HP+SAEW并联组的天麻鲜切片进行煮制，同时设置未进行烹饪的鲜切天麻为对照组。煮制方法：加1000mL纯水倒入锅中，煮沸，将各组鲜切片放进沸水中10min，然后取出于冰水浴中迅速冷却，沥干。检测煮制后各组天麻鲜切片的硬度、嫩度、色差、糊化度。检测结果如图14-16所示。

从图14可以看出，与对照组的鲜切天麻相比，煮制后的HP+SAEW并联组天麻鲜切片样品的硬度均降低，差异显著，但与煮制后的未处理组相比差异不显著。说明HP+SAEW并联加工处理对煮制后的天麻鲜切片的硬度影响不显著。

从图15可以看出，与对照组的鲜切天麻相比，煮制后的HP+SAEW并联组天麻鲜切片样品的嫩度变化不显著，说明HP+SAEW并联加工处理对煮制后的天麻鲜切片的嫩度影响不显著。

从图16可以看出，与对照组的鲜切天麻相比，煮制后各组的天麻鲜切片的色差值增加，说明煮制会改变天麻鲜切片的色泽。但与煮制后的未处理组相比，煮制后的HP+SAEW并联组在有效氯浓度为0-38mg/L时，天麻鲜切片的色差值变化不显著，有效氯浓度为49mg/L时，天麻鲜切片色差值变化显著，但该差异远小于煮制过程带来的色泽变化。说明HP+SAEW并联加工处理对煮制后的天麻鲜切片的嫩度影响不大。

从图17可以看出，煮制会使天麻鲜切片中的淀粉发生糊化。与煮制后的未处理组相比，HP-SAEW并联组的天麻鲜切片在有效氯浓度为24-49mg/L的范围内，糊化度变化显著，但该差异远小于有效氯浓度为0时的糊化度变化。说明HP+SAEW并联加工处理对煮制后的天麻鲜切片的糊化度影响不大。

综上，HP-SAEW并联加工处理对天麻鲜切片的食用品质影响不大。

以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。