一种炎症检测试剂盒

技术领域

本发明涉及生物检测领域,并且更具体地涉及一种炎症检测试剂盒。

背景技术

艰难梭菌(Clostridium difficile，CD)，又称难辨梭状芽孢杆菌或难辨梭菌，是一种可形成孢子的、厌氧的革兰氏阳性杆菌，存在于环境、动物及人类的肠道中。1935年Holl等首次在健康新生儿大便中分离出该菌，并命名为难辨杆菌(Bacillus difficilis)，以反映其培养的难度之大。1978年，Larson等和Bartlett等确认艰难梭菌是伪膜性肠炎的致病菌，且毒素的存在与致病性相关。目前，艰难梭菌已是发达国家医院感染性腹泻的主要病原菌。艰难梭菌侵入人体后，机体免疫系统与菌株毒力相互作用，其临床表现可有无症状携带、轻度到重度腹泻、结肠炎、伪膜性肠炎、肠梗阻、中毒性巨结肠和暴发性肠炎合并穿孔等，甚至危及生命。因艰难梭菌导致的感染或腹泻被称为艰难梭菌感染(Clostridiumdifficile infection,CDI)或艰难梭菌相关性腹泻(Clostridium difficile-associateddiarrhea，CDAD)。

艰难梭菌包括两类，产毒株和非产毒株。其产毒株可产生以下三种毒素：毒素A(Toxigenic Clostridium difficile A，Tcd A)、毒素B(Toxigenic Clostridiumdifficile B，Tcd B)及二元毒素(binary toxin,CDT)。其中，毒素A与毒素B在艰难梭菌致病过程中影响最大，是主要致病因子。毒素A有肠毒性，以破坏肠道血管及黏膜为主，毒素B有细胞毒性，可进入肠上皮细胞，破坏细胞骨架肌动蛋白的形成从而引发临床症状。近些年大量临床研究显示，CDI患者可以只有毒素B的存在，当患者毒素A阴性而毒素B阳性时，其临床症状严重程度更高。

目前公认的诊断CDI的“金标准”是细胞毒性试验和产毒培养(toxigenicculture，TC)。细胞毒性试验因操作复杂，价格昂贵且花费时间较长，不适合临床实验室日常开展。产毒培养是在先行培养得到艰难梭菌培养物后，通过聚合酶链反应(Polymerasechain reaction，PCR)扩增毒素基因以便进一步确认分型，优势在于具有较高的特异性和敏感性，但艰难梭菌培养困难，花费时间长且需要高精尖仪器辅助。谷氨酸脱氢酶(Glutamate dehydrogenase,GDH)是艰难梭菌表面表达的抗原性蛋白，具有较高的稳定性和灵敏性，但是对菌株是否存在产毒性无区分能力，因而需要与其他方法联合应用。

GDH具有高敏感性，但存在假阳性及无法判断艰难梭菌中是否携帯有毒素基因的缺陷。而核酸检测可精确检测毒素基因分型，但大量样本进行基因检测花费巨大，周期长，需要高精尖仪器辅助，检测费用昂贵。因此，现有方法的临床敏感性不是十分理想。

发明内容

为了更好规避以上缺陷,为患者提供尽早、准确的诊断结果，提供了一种制备简单、成本低廉、使用方便、不需要高精尖仪器、更为准确、高效的检测试剂盒。所述试剂盒通过核酸-抗体双重检测方法对艰难梭菌进行检测，能更有效检测艰难梭菌及其基因分型(即是否携带毒素B基因),从而及早诊断，利于患者尽快治疗，并且避免过度治疗。

本发明提供以下技术方案：

本发明提供一种特异性结合艰难梭菌谷氨酸脱氢酶(GDH)的单克隆抗体G7-3，其包含重链可变区和轻链可变区，该重链可变区含有CDR1区、CDR2区和CDR3区，重链CDR1区、CDR2区和CDR3区的氨基酸序列分别如SEQ ID NO:1、2和3所示；该轻链可变区含有CDR1区、CDR2区和CDR3区，其中轻链CDR1区、CDR2区和CDR3区的氨基酸序列分别如SEQ ID NO:4、5和6所示。

另一方面，本发明提供一种特异性结合艰难梭菌GDH的单克隆抗体G7-3，其包含重链可变区和轻链可变区，其中重链可变区包含氨基酸序列SEQ ID NO:7，轻链可变区包含氨基酸序列SEQ ID NO:8。

在一些实施方案中，本发明所述的抗艰难梭菌GDH的单克隆抗体包含两条重链和两条轻链，或由两条重链和两条轻链构成，其中各重链包含上述的重链恒定区序列、重链可变区序列或CDR序列，且各轻链包含上述的轻链恒定区序列、轻链可变区序列或CDR序列。本发明的抗体可以是全长抗体，所述全长抗体包含恒定区，所述全长抗体轻链恒定区进一步包含鼠源κ、λ链序列。所述全长抗体重链恒定区进一步包含鼠源IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3、IgA或IgM序列。

在一些实施方式中，本发明的抗艰难梭菌GDH的单克隆抗体是由上述的抗艰难梭菌抗体或抗体片段形成的Fab片段、Fab'片段、F(ab')2片段、Fv片段、双抗体、线性抗体、单链抗体分子或多特异性抗体。

本发明另外提供一种艰难梭菌荧光量子点快速检测试纸，其中将G7-3单克隆抗体标记量子点配制备而成。

本发明提供另外一种用于快速检测艰难梭菌毒素B的试纸条RPA(LFD RPA)检测试剂盒，含有侧流层析试纸条，以及有一对引物和一条探针，其中所述上游引物序列如SEQ IDNO:9所示，所述下游引物序列如SEQ ID NO:10所示，所述探针的序列如SEQ ID NO:11所示。

具体的，上游引物(SEQ ID NO:9)：

CATTAATACATGATGGTCAATATTATTTTAATG

下游引物(SEQ ID NO:10)：

Biotin-CTATATTCAACTGCTTGTCCGTAAATATTATC

探针序列(SEQ ID NO:11)：

FAM-CTGGAGTACAAAACATAGATGATAATTATTTCTATATAGATGAGAAG

在一些实施例中，本发明的探针在中间距5’端36bp的位置处采用dSpacer修饰，dSpacer分子两侧的距5’端35bp和37bp位置的胸腺嘧啶(dT)分别被荧光基团FAM和淬灭基团BHQ1取代，并且在探针的3’末端通过阻塞基团C3Spacer修饰。

在一些实施例中，如上所述的核酸探针，所述荧光基团可替换为TAMARA，所述淬灭基团可替换为BHQ2；所述的脱碱基位点可替换为四氢呋喃；所述探针3’端的C3Spacer修饰可替换为磷酸化设计或连接biotin-TEG。

所述试纸条带有检测线，检测线上固定有分子A；

序列如SEQ ID NO.10所述的引物，其末端带有特异性结合前述分子A的分子B。所述分子A是生物素配体，分子B是生物素。

在本发明所述的试纸条RPA检测试剂盒中，优选的，所述试剂盒中还包括水解缓冲液，醋酸镁以及ddH

本发明提供的试纸条法，RPA探针中间位置的两个胸腺嘧啶核苷酸上分别标记一个荧光基团和一个荧光淬灭基团，两个基团之间设计一个脱碱基位点(dSpacer)，该位点可被具有3'-5'外切酶活性的核酸外切酶III识别、切割，游离荧光基团，从而发出荧光信号随后被荧光检测的仪器；同时留下可延伸3’-OH，DNA聚合酶以探针为“正向引物”继续延伸合成DNA，与反向引物(带亲和标记，例如生物素)一起扩增出一种带有双重标记(荧光基团标记、亲和标记)的扩增产物；该产物在侧向流检测试纸中层析，遇到可识别亲和标记的试纸区域(通常为一条线，即“检测线”，带有链霉亲和素)时，则被富集，表现出线形荧光信号。试纸条法由于不依赖荧光定量PCR仪，成本和适用范围更广。

本发明进一步的，提供一种艰难梭菌的检测方法，它是使用前述引物和探针对样品进行扩增，再用核酸检测试纸条检测扩增产物即可。结果检测：结合试纸条进行显色，上述扩增产物吸取5μL-25μL，用缓冲液1×PBST稀释10倍-50倍，用相应标记的试纸条进行检测。结果判读：同时出现T线和C线为阳性(+)，仅出现C线为阴性(-)，只出现T线需考虑试纸条是否有效性。

在一些实施方式中，本发明提供一种核酸-抗体双重检测艰难梭菌的试剂盒，所述试剂盒含有特异性检测艰难梭菌核酸的RPA试剂盒以及特异性检测艰难梭菌的含有单克隆抗体的试纸条；所述RPA试剂盒含有SEQ ID NO:9和10的引物以及SEQ ID NO:11的探针；所述单克隆抗体的试纸条为将抗艰难梭菌单克隆抗体G7-3标记量子点制备而成的荧光量子点快速检测试纸条；其中，所述抗艰难梭菌单克隆抗体G7-3包括重链可变区，其包含SEQ IDNO:1所示的CDR1、SEQ ID NO:2所示的CDR2和SEQ ID NO:3所示的CDR3,以及轻链可变区，其包含SEQ ID NO:4所示的CDR1、SEQ ID NO:5所示的CDR2和SEQ ID NO:6所示的CDR3。

在一些实施方式中，本发明提供一种核酸-抗体双重检测艰难梭菌的试剂盒，所述试剂盒含有特异性检测艰难梭菌核酸的RPA试剂盒以及特异性检测艰难梭菌的含有单克隆抗体的试纸条；所述RPA试剂盒含有SEQ ID NO:9和10的引物以及SEQ ID NO:11的探针；所述单克隆抗体的试纸条为将抗艰难梭菌单克隆抗体G7-3标记量子点制备而成的荧光量子点快速检测试纸条；其中，所述抗艰难梭菌单克隆抗体G7-3单克隆抗体的重链可变区序列如SEQ ID NO:7所示,轻链可变区序列如SEQ ID NO:8所示。

一种检测艰难梭菌试剂盒的应用，所述试剂盒通过体外测定来自受试者的生物试样中是否存在艰难梭菌及其含量。

在一些实施方式中，本发明所述的生物试样为粪便、血液、血浆、血清、尿、唾液或组织。

有益效果

本发明通过针对艰难梭菌的DNA序列进行分析获得了特异性针对艰难梭菌的RPA引物和探针，并制备出艰难梭菌检测试剂；同时针对艰难梭菌筛选并获得效果较好的单克隆抗体，将所述单克隆抗体标记量子点和其他抗体标记的硝酸纤维素膜制备获得艰难梭菌荧光量子点快速检测试纸，将以上两个检测方法进行组合使用，用于艰难梭菌患者的诊断，能够进一步提高检测的准确性，从而及早诊断，利于患者尽快治疗，适于大规模推广使用。

附图说明

附图用来提供对本发明的进一步理解，并且构成说明书的一部分，与本发明的实施例一起用于解释本发明，并不构成对本发明的限制。

图1小鼠抗体亚型鉴定结果

图2RPA检测方法灵敏度评价结果图

具体实施方式

以下结合附图对本发明的优选实施例进行说明，应当理解，此处所描述的优选实施例仅用于说明和解释本发明，并不用于限定本发明。

实施例1.制备艰难梭菌GDH抗原

取艰难梭菌C.difficile-630菌株扩增培养后，采用DNA提取试剂盒(天根)提取DNA。以菌液全基因组为模板，通过PCR扩增GDH基因并将其与原核表达载体pET-30a相连，此表达载体命名为“pET-30a-GDH”。将重组表达质粒pET-30a-GDH转化感受态细胞，培养12～14h后，挑取阳性单菌，于LB(kana+)液体培养基2mL/管，37℃条件下180r摇速过夜摇菌，第二天，将菌液与LB冻存液1:1混匀，作为种子菌，-80℃储存备用。取种子菌500μl，复苏后进行扩大培养，摇菌约4h后，待其进入对数增长期，OD600约为0.6～0.8，加入终浓度为0.8mmol/L的IPTG进行诱导，继续摇菌4h后，收集菌液。用超声裂解液(含有4M尿素)复悬沉淀，在冰浴条件下超声裂解菌体，超声后10000rpm离心，吸取上清液，用0.22μm滤器过滤，放置于4℃备用。将5mL规格Ni柱(预装柱)连接于于纯化仪通路上，并用25mL体积Bingdingbuffer平衡柱子，流速1mL/mL，同时将收集盘收集体积设置为2mL/tube。将超声后的上清液5mL从仪器上样孔上样，流速0.5mL/min，待样品流穿柱体后，分别用25mL的Washing buffer和Elution buffer进行洗涤、洗脱，收集洗脱液，经超滤管脱盐浓缩，测得浓度并分装储存于-80℃备用。

实施例2.制备生物素化标记的艰难梭菌GDH抗原

按照说明书，采用生物素化连接酶B0101A(GnenCopoia)对GDH抗原进行生物素化标记。生物素化的GDH抗原被命名为Biotin-GDH。将GDH抗原中加入BufferA/B和BirA连接酶，30℃孵育2h。采用ELISA方法检测生物素化效率。即将起始浓度为500ng/ml的Biotin-GDH按1：2倍比稀释，并包被ELISA板，随后采用SA-HRP孵育。以生物素化标准品作为对照，最终确定Biotin-GDH生物素化标记效率为75％。

实施例3.抗艰难梭菌GDH抗体制备

采用实施例1纯化的重组蛋白GDH作为抗原，免疫Balb/c雌性小鼠。重组蛋白与弗氏佐剂等体积(1mL：1mL)混合，用注射器法充分乳化，腹部多点注射法免疫小鼠，免疫剂量为60μg/只。二免、三免分别用弗氏不完全佐剂与重组蛋白GDH等体积混合，腹部多点注射法免疫小鼠，免疫剂量为30μg/只。第3次加强免疫后7天取小鼠血清检测效价,效价最高的小鼠以尾静脉注射冲击免疫,抗原用生理盐水混匀,剂量为50μg/只。取免疫后的Balb/c小鼠脾细胞，使用PEG法将其与骨髓瘤Sp2/0细胞株融合，将融合后的细胞用20％FBS-HAT-DMEM培养基重悬，然后均匀铺于96孔板内，37℃，5％CO

实施例4.单克隆抗体的纯化

取BALB/c小鼠，在接种杂交瘤细胞前1周，经腹腔注射降植烷，0.5ml/只。1周后，每只小鼠经腹腔接种约1X10

实施例5.抗艰难梭菌抗体亚型鉴定

根据亚类测定试剂(sigma公司)对间接ELISA筛选出的阳性鼠单克隆细胞株进行亚类测定。试剂盒中提供的酶标板上已经预包被了针对小鼠IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3、IgA、IgM、kappa轻链、lambda轻链的特异性抗体，将实施例4中纯化的抗艰难梭菌抗体G7-3样品加入样品孔中，每孔50μl，无需孵育。将1X羊抗鼠IgA+IgM+IgG-HRP加入样品孔中，每孔50μl，轻轻混匀后，孵育1h。扣去孔中液体加入1XPBST洗孔3次，吸水纸吸干多余水分。加入显色液，每孔100μl，室温避光显色15min。加入100μl终止液，终止显色反应。结果如图1所示，本发明的单克隆抗体为IgG2b亚型。

实施例6.单克隆抗体序列确定

从液氮中取出G7-3杂交瘤细胞细胞冻存管，于37℃快速融解，1000rpm，5min离心去除冻存液，置于100mm孔板，培养至占培养板约80％，加入1ml Trizol试剂(Thermo公司)，并依据说明书提取杂交瘤细胞总RNA。取2.5μg上述总RNA，加入DECP水，使体积达到11μl，加入1.0μl oligo(dT)(10μM)，加入1μl dNTPs(10mM)，混合均匀，65℃孵育5分钟后置冰上1分钟，然后加入4μl RT buffer(5×)，1.0μl DTT(100mM)，1μl Ribonuclease Inhibitor及1μl逆转录酶(takara公司)，50℃反应10min。80℃孵育10分钟以终止反应，获得的cDNA保存在-20℃。设计特异性的巢式PCR引物，该扩增反应中所使用的引物序列与抗体可变区第一框架区和恒定区互补，采用常规PCR方法扩增目的基因。其中，引物序列的设计按照文献(Bodo Brocks.Species-Crossreactive scFv Against the Tumor Stroma Marker“Fibroblast Activation Protein”Selected by Phage Display From an ImmunizedFAP

测序结果显示,本发明所述的抗艰难梭菌抗体G7-3的重链和轻链可变区的氨基酸序列分别如SEQ ID NO：7和SEQ ID NO：8所示；该抗体的重链可变区3个CDR的氨基酸序列分别如SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3所示；轻链可变区3个CDR的氨基酸序列分别如SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6所示。

实施例7.抗艰难梭菌抗体亲和力测定

生物层干涉技术(biolayer interferoinetry)用来测量GDH抗原和抗艰难梭菌GDH抗体之间的相互作用。Octet QKe仪器(ForteBio)配备了链霉亲和素(SA)生物传感器。40μg/m1的Biotin-GDH抗原偶联到SA传感器，从100nM至1.56nM系列稀释的艰难梭菌GDH单克隆抗体与GDH抗原包被的生物传感器反应10分钟，随后在PBS缓冲液中解离10分钟。之后用ForteBio数据分析软件分析结果以确定解离常数(Kd)，解离常数是用于描述抗体和抗原之间的结合强度的量度，Kon(1/Ms)是抗体抗原复合物形成的结合速率(on-rate)，Koff(1/s)是抗体抗原复合物解离的解离速率(off-rate)。如表1所示，本发明的抗体亲和力较高，亲和力K

表1

实施例8.抗艰难梭菌多克隆抗体的制备

采用实施例1纯化的重组蛋白GDH作为抗原，免疫雌性家兔。重组蛋白与弗氏佐剂等体积(1m L：1m L)混合，用注射器法充分乳化，颈后、背部多点注射法免疫兔子，免疫剂量为500μg/只。二免、三免分别用弗氏不完全佐剂等体积混合，采用颈后、背部多点注射法免疫，免疫剂量为400μg/只。四免用耳缘静脉注射法，五免耳缘静脉加强免疫一次，免疫剂量为100μg/只。五免后一周心脏采血，采集的血清先在室温静置2h后转移至4℃静置过夜，4000rpm离心15min，收集上清分装于5mL离心管，-80℃备用。取部分血清进行血清效价检测。剩余血清自-80℃取出后室温融解，准确取0.5m L血清用平衡液1:20稀释为10mL后，经0.45μl滤器过滤于新离心管。将Protein A预装柱连接入纯化仪通路，10mL平衡液1mL/min流速平衡柱子。取处理后的血清上样，0.5mL/min流速。同时点击开启收集盘，将收集体积设置为1.5mL/tube。分别用10mL的平衡液和洗脱液进行洗涤、洗脱，同时向收集盘收集管内添加300μl/tube的中和液，以免纯化抗体在酸性洗脱液中变性、降解。纯化结束后将洗脱液汇总，经过超滤管超滤脱盐浓缩，得到抗艰难梭菌GDH多克隆抗体，检测抗体浓度并分装储存于-80℃备用。

实施例9.艰难梭菌荧光量子点快速检测试纸的制备及验证

将实施例4纯化的G7-3单克隆抗体标记量子点，实施例8纯化的抗艰难梭菌多克隆抗体包被硝酸纤维素膜搭配检测。将其制备成快速检测试纸后，对其进行特异性检测。将产气荚膜梭菌(Clostridium perfringens)、肠炎沙门菌、金黄葡萄球菌、绿脓杆菌、霍乱弧菌、艰难梭菌、PBS稀释重组抗原分别用所述艰难梭菌荧光量子点快速检测试纸检测，观察是否存在交叉反应。(+)代表检测结果阳性，(-)代表检测结果阴性。检测结果如表2所示，结果表明艰难梭菌荧光量子点快速检测试纸与产气荚膜梭菌、肠炎沙门菌、金黄葡萄球菌、绿脓杆菌、霍乱弧菌的反应结果均为阴性，与艰难梭菌和重组抗原的反应结果为阳性，所以可以初步确定试纸条具有良好的特异性。

表2

实施例10.RPA特异性检测引物的设计

针对艰难梭菌毒素B的基因序列设计检测艰难梭菌毒素B的RPA引物组，其序列如下所示：

上游引物(SEQ ID NO:9)：

CATTAATACATGATGGTCAATATTATTTTAATG

下游引物(SEQ ID NO:10)：

Biotin-CTATATTCAACTGCTTGTCCGTAAATATTATC

探针序列(SEQ ID NO:11)：

FAM-CTGGAGTACAAAACATAGATGATAATTATTTCTATATAGATGAGAAG，探针在中间距5’端36bp的位置处采用dSpacer修饰，dSpacer分子两侧的距5’端35bp和37bp位置的胸腺嘧啶(dT)分别被荧光基团FAM和淬灭基团BHQ1取代，并且在探针的3’末端通过阻塞基团C3Spacer修饰。

实施例11.艰难梭菌DNA提取

按细菌基因组DNA提取试剂盒(天根)说明书进行操作，具体操作步骤为:取毒素B阳性的艰难梭菌培养液1-5ml，10,000rpm(～11,500×g)离心1min，尽量吸净上清。向菌体沉淀中加入110μl缓冲液(20mM Tris,pH 8.0；2mM Na2-EDTA；1.2％Triton)，和70μl溶菌酶溶液(50mg/ml)，37℃处理30min。加入4μl RNase A(100mg/ml)溶液，振荡15s，室温放置5min。向管中加入20μl Proteinase K溶液，混匀。加入220μl缓冲液GB，振荡15s，70℃放置10min。加220μl无水乙醇，充分振荡混匀15s。将所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中)，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。向吸附柱CB3中加入500μl缓冲液GD，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。向吸附柱CB3中加入600μl漂洗液PW，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，吸附柱CB3放入收集管中。将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200μl洗脱缓冲液TE，室温放置2-5min，12,000rpm(～13,400×g)离心2min，将溶液收集到离心管中，所的溶液即为提取的艰难梭菌基因组DNA,-20℃保存备用。

实施例12.RPA反应灵敏度检测

以实施例11提取的毒素B阳性的艰难梭菌DNA作为模板，进行RPA试验，采用筛选的引物进行RPA扩增，同时设置超纯水为阴性对照，反应温度为35℃，反应时长为18min，RPA反应体系为50μl，其中，2μl正反向引物(10μM)，2μl反向引物(10μM)，0.6μl探针，25μl含重组酶、DNA聚合酶、单链结合蛋白、核酸内切酶IV的缓冲液，1μl模板和17.9μl ddH2O，充分振荡混匀并且瞬离，最后加入2.5μl的280mM醋酸镁，将反应管置于实时荧光PCR仪中36℃恒温反应相应时长；结果如图2所示。如图2所示，当模板浓度为50pg，5pg，0.5pg时，均出现明显扩增曲线，但模板浓度低于0.5pg时无明显扩增曲线，即说明RPA的检测最低限为0.5pg，具有较好的检测精度。

实施例13.艰难梭菌RPA检测试纸条的制备及检测

链霉亲和素包被的纳米金颗粒的制备:取1ml纳米金颗粒溶液(0.15pmol/mL)，加入200mM的硼砂溶液,调整pH值至9.5。同时,在另一个试管中将2μl的链霉亲和素(2mg/ml)与398μl的硼砂溶液(2mM)混合；将稀释的链霉亲和素加入到前述的纳米金颗粒溶液中,以50μl的量递加，边加边搅拌。将混合物置室温放置45分钟,加入含有155.6μl含10％BSA的2mM硼砂溶液,继续将溶液在室温放置10分钟，4500g离心15分钟，吸弃液体，用1ml的洗涤液(含有10g/L BSA的2mM硼砂溶液)重悬沉淀，4500g离心15分钟,吸弃液体,将红色的沉淀重悬在250μl含有5％BSA、137mM NaCl和0.025％吐温-200的缓冲液中。按照此比例制备足量的链霉亲和素包被的纳米金颗粒,取250μl上述包被的纳米金颗粒滴加到7mm×300mm激光切割的玻璃纤维垫上,使之扩散均匀,在实验台上干燥过夜。

胶体金侧向流免疫层析试纸条的制备:用含有5％甲醇、2％蔗糖的100mM碳酸氢钠缓冲液将抗羧基荧光素抗体和生物素化的抗鼠IgG分别稀释到终浓度为0.5mg/ml和1.0mg/ml。所有抗体均用侧向流试剂分配器,分配器头的速度设定在1～3厘米/分钟,优选为2厘米/分钟,注射泵的流速设定在0.1～0.3ml/分钟,优选为0.1ml/分钟。当两种抗体在纸条上点样完成后,将试纸条在37℃干燥1小时。然后按照如下步骤进行试纸卡的装配:首先将一个17mm×300mm的吸收垫放在塑料支撑的硝酸纤维素膜的右手下游端,二者重叠2毫米；随后将一个7mm×300mm含有干燥金纳米颗粒的玻璃纤维垫放在硝酸纤维素膜的左手上游端,二者重叠2毫米；最后将一个12mm×300mm的玻璃纤维样品垫放在金纳米颗粒垫的左手端,二者重叠2毫米。装配完成后,将试纸卡立即裁成3mm宽的试纸条即得到胶体金侧向流免疫层析试纸条,密封、干燥保存。

此外，艰难梭菌的RPA试剂盒包括实施例10中设计的引物和探针、水解缓冲液、酶混合物、醋酸镁(280mM)、无核酸酶纯水以及侧向层析试纸条，试纸条带有检测线，检测线上固定有分子链霉亲和素，能够与引物SEQ ID NO:10末端的生物素特异性结合。

将所述的试纸条分别检测实施例11提取的艰难梭菌DNA、肠炎沙门菌、金黄葡萄球菌、绿脓杆菌、霍乱弧菌的基因组DNA(方法如实施例11所述)，以确定本发明RPA检测方法的特异性。RPA反应体系为50μl，其中，2μl正反向引物(10μM)，2μl反向引物(10μM)，0.6μl探针，25μl含重组酶、DNA聚合酶、单链结合蛋白、核酸内切酶IV，1μl样品和17.9μl ddH2O，充分振荡混匀并且瞬离，最后加入2.5μl的280mM醋酸镁。反应温度设为35℃的水浴锅中进行，反应时间设定为18min。结果表明，艰难梭菌DNA的样本同时出现T线和C线为阳性(+)，其他病原体的DNA样本仅出现C线为阴性(-)，说明本发明的试纸条试剂盒可以有效检测艰难梭菌，结果如下表3所示。

表3

实施例14.实际样品检测

取艰难梭菌毒素患者粪便样本200个，同时取阴性对照样本200个，样本均来源于天津市人民医院。

根据粪便基因组DNA提取试剂盒(天根)说明书，提取粪便总DNA。具体步骤如下：称取粪便样本180-220mg至2ml离心管中，并将管子置于冰上。向样本中加入500μl缓冲液SA，100μl缓冲液SC，15μl Proteinase K，0.25g的研磨珠间歇振荡1min至样本充分混匀。70℃孵育15min，孵育期间震荡2-3次。涡旋15s，12,000rpm(～13,400×g)离心3min，转移上清液至新的离心管中，加入10μl的RNase A，震荡混匀后室温放置5min。加入200μl缓冲液SH，震荡混匀，置冰上5min。12,000rpm(～13,400×g)离心3min。将所得上清液转移至新的1.5ml离心管，加入等体积缓冲液GFA。将所得溶液加入到一个吸附柱CR2中(吸附柱放入收集管中)，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，将吸附柱CR2放入收集管中。向吸附柱CR2中加入500μl缓冲液GD，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，将吸附柱CR2放入收集管中。加入700μl漂洗液PW，12,000rpm(～13,400×g)离心30s，倒掉废液，吸附柱CR2放入收集管中。将吸附柱CR2放回收集管中，12,000rpm(～13,400×g)离心2min，倒掉废液。将吸附柱CR2置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。将吸附柱CR2转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50μl洗脱缓冲液TB，室温放置2-5min，12,000rpm(～13,400×g)离心2min，将溶液收集到离心管中。所的溶液即粪便基因组DNA。

取粪便提取液及粪便基因组DNA，分别采用荧光量子点快速检测试纸以及试纸条RPA进行检测，检测结果见表4。从表4结果可以看出，抗体荧光量子点试纸条和RPA试纸条的方法均可以较好的检测艰难梭菌阳性患者，荧光量子点快速检测试纸检测的阳性率为99％，试纸条RPA检测阳性率为83.5％，荧光量子点快速检测试纸检测与试纸条RPA联合检测艰难梭菌的阳性率达到为100％，两者联合检测高于其单独检测。此外，对健康患者样品检测时发现，抗体荧光量子点试纸条存在3％的误诊率，但试纸条RPA的正确率为100％，因此荧光量子点快速检测试纸检测与试纸条RPA的联合应用进一步提高诊断的正确率。将艰难梭菌GDH抗原检测与毒素B的DNA检测二者结合，可以起到良好的补充，加强检测结果的准确性。

表4

序列表

<110> 北京保图生物技术有限公司

<120> 一种炎症检测试剂盒

<160> 11

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 5

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

Ser Tyr Gly Asp His

1 5

<210> 2

<211> 17

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

Asn Ile Gly Ala Arg Met Thr Asp Glu Ser Met Lys Val Cys Phe Lys

1 5 10 15

Gly

<210> 3

<211> 12

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

Gly Ala Ser Arg Gly Asn Thr Glu Val Phe Asp Ile

1 5 10

<210> 4

<211> 13

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

Glu Ala Arg Gly Pro Thr Ser Val Gln Gln Tyr Leu Ala

1 5 10

<210> 5

<211> 7

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

Arg Ala Ala Ser Leu Gln Ser

1 5

<210> 6

<211> 9

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 6

Gln Gln Arg Ala Ser Tyr Pro Tyr Thr

1 5

<210> 7

<211> 121

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 7

Glu Val Gln Leu Gln Gln Ser Gly Pro Glu Leu Val Lys Pro Gly Ala

1 5 10 15

Ser Val Lys Ile Tyr Cys Lys Ala Ser Gly Tyr Thr Phe Thr Ser Tyr

20 25 30

Gly Asp His Trp Val Lys Gln Ser His Gly Lys Ser Leu Glu Trp Ile

35 40 45

Gly Asn Ile Gly Ala Arg Met Thr Asp Glu Ser Met Lys Val Cys Phe

50 55 60

Lys Gly Lys Ala Thr Leu Thr Val Asp Lys Ser Ser Ser Thr Ala Tyr

65 70 75 80

Met Glu Leu Arg Ser Leu Thr Ser Glu Asp Ser Ala Val Tyr Tyr Cys

85 90 95

Ser Arg Gly Ala Ser Arg Gly Asn Thr Glu Val Phe Asp Ile Trp Gly

100 105 110

Gln Gly Thr Leu Val Thr Val Ser Ala

115 120

<210> 8

<211> 109

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 8

Asp Ile Val Met Thr Gln Ser Pro Ala Ser Leu Ala Met Ser Leu Gly

1 5 10 15

Lys Arg Ala Thr Ile Ser Cys Glu Ala Arg Gly Pro Thr Ser Val Gln

20 25 30

Gln Tyr Leu Ala Trp Tyr Gln Gln Lys Pro Gly Gln Pro Pro Lys Leu

35 40 45

Leu Ile Tyr Arg Ala Ala Ser Leu Gln Ser Gly Val Pro Ala Arg Phe

50 55 60

Ser Gly Ser Gly Ser Gly Ala Asp Phe Thr Leu Thr Ile Asp Pro Val

65 70 75 80

Glu Gly Asp Asp Val Ala Leu Tyr Tyr Cys Gln Gln Arg Ala Ser Tyr

85 90 95

Pro Tyr Thr Phe Gly Gly Gly Thr Lys Met Glu Ile Lys

100 105

<210> 9

<211> 33

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 9

cattaataca tgatggtcaa tattatttta atg 33

<210> 10

<211> 32

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 10

ctatattcaa ctgcttgtcc gtaaatatta tc 32

<210> 11

<211> 47

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 11

ctggagtaca aaacatagat gataattatt tctatataga tgagaag 47