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一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记及引物组和应用

文献发布时间:2024-04-18 20:00:50


一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记及引物组和应用

技术领域

本发明涉及水稻育种领域,特别是一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记及引物组和应用。

背景技术

水稻是世界上最重要的谷类作物之一,也是世界约一半人口的主要食物来源。随着我国人民生活水平的提高,稻米需求呈现多样化趋势,在产量仍作为重要指标的同时,稻米外观品质也受到越来越高的重视。粒形作为外观品质性状还会影响垩白和正精米率等指标,严重影响加工品质,降低稻米的产量和市场价值。GW5能够通过油菜素内酯信号通路调控水稻籽粒外颖细胞数,从而调节粒宽,在水稻育种中具有较高的利用价值。

水稻品种的粒型改良是通过鉴定籽粒长宽表型对植株进行选择,耗费时间长,选择效率较低。利用分子标记辅助选择育种简单有效,可以降低育种成本,缩短选育周期,亦可进行有目的的多基因聚合,提高育种效率,带来巨大的社会经济效益。

发明内容

为了解决上述技术问题,本发明提供了一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记及引物组和应用。

为达到上述目的,本发明是按照以下技术方案实施的:

本发明的第一个目的是要提供一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记,所述PARMS分子标记为GW5-M1,所述GW5-M1的多态性位点位于水稻5号染色体的第5360573至第5360574位碱基,第5360573位和第5360574位碱基间存在如SEQ ID NO.3所述的1212bp碱基序列。

本发明的第二个目的是要提供一种用于检测水稻窄粒型GW5基因的分子标记引物组,所述引物组包括特异性引物和通用引物,其中,所述特异性引物包括核苷酸序列如SEQID NO.4所示的GW5-M1Fg和核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示的GW5-M1Ft;所述通用引物为核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示的GW5-M1R。

进一步地,所述GW5-M1Fg的5’端连接FAM荧光序列,Primer GW5-M1Ft的5’端连接HEX荧光序列。

本发明的第三个目的是要提供一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记在鉴定水稻GW5基因型中的应用。

本发明的第四个目的是要提供一种用于检测水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记的引物组在鉴定水稻GW5基因型中的应用。

具体地,用于检测水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记的引物组在鉴定水稻GW5基因型中的应用,包括如下步骤:

S1、从水稻叶片中提取基因组DNA;

S2、以步骤S1中提取的基因组DNA为模板,利用用于检测水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记的引物组,用PARMS技术对GW5-M1分子标记进行检测:若GW5-M1检测为HEX荧光,判定测试的水稻样品为纯合的窄粒型GW5基因型;若GW5-M1检测为FAM荧光,判定测试的水稻样品为纯合的宽粒型GW5基因型;若GW5-M1的多态位点同时检测到HEX和FAM荧光,判断待测水稻为杂合的窄粒型GW5基因型。

本发明的第五个目的是要提供一种水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记在水稻育种中的应用,具体地,利用用于检测水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记的引物组在鉴定水稻GW5基因型中的应用鉴定出水稻样品的基因型,然后选择携带GW5基因的水稻品系进行后续育种。

与现有技术相比,通过对本发明的水稻粒型基因GW5的分子序列,应用PARMS技术对水稻材料进行窄粒型GW5基因检测,可在籼稻、粳稻等不同种质资源中快速、精准的检测水稻窄粒型GW5基因。本发明在检测过程中不需要酶切、电泳及测序等繁琐的程序,减少PCR产物气溶胶的污染以及EB等有毒物的使用,同时可在分子标记辅助育种的早期进行前景选择和背景选择,提高背景回复率,减小育种群体的规模,加快育种进程,有利于GW5基因高效、环保的应用于水稻商业化分子育种中。

附图说明

图1为本发明实施例的全基因组关联分析曼哈顿图。

图2为本发明实施例的分子标记位置。

图3为PARMS检测技术流程图。

图4为本发明实施例中不同品种分子标记GW5-M1的分型图。

具体实施方式

为使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步的详细说明。此处所描述的具体实施例仅用于解释本发明,并不用于限定发明。

以下实施例中所使用的试验方法如无特殊说明,均为常规方法;所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到的试剂和材料。

本实施例公开了水稻粒型基因GW5的PARMS分子标记,通过全基因组关联分析定位到目标基因GW5,所述PARMS分子标记为GW5-M1,所述GW5-M1的多态性位点位于水稻5号染色体的第5360573位和第5360574位碱基,第5360573位和第5360574位碱基间存在1212bp的插入(SEQ ID NO.3),窄粒型GW5核苷酸序列(SEQ ID NO.1)和宽粒型GW5核苷酸序列(SEQ IDNO.2)如表1所示,标记GW5-M1在水稻染色体上的位置如图2所示。

表1

具体设计过程如图3所示,通过已克隆目标基因GW5确定物理位置,提取多态位点和侧翼序列,通过设计和合成标记的引物序列,再对标记进行筛选测试,具体如下:

1)全基因组关联分析

利用基因芯片确定280份种质资源的DNA指纹图谱,对材料的籽粒宽度表型进行全基因组关联分析,定位结果如图1所示,在第5号染色体的第5400007位碱基处检测到一个显著性位点,该位点附近存在一个调控水稻籽粒宽度的主效基因GW5。

2)引物设计

根据文献的定位标记信息,确定GW5(GenBank:DQ991205.1)物理位置是日本晴(MSU7.0)的5号染色体5365122-5366701碱基,提该区间的侧翼序列,并利用在线引物设计网站http://www.snpway.com/对其进行引物设计。GW5-M1的引物设计如表2所示,每组标记有三条引物,在其中两条特异性引物5’端分别连接FAM和HEX荧光序列。引物委托武汉市景肽生物科技有限公司合成。

表2

3)样品检测

DNA提取:从水稻叶片中提取基因组DNA,采用简化CTAB法。

PARMS反应测试:10ul PCR反应体系。在PCR反应板中加入20ng DNA样品,烘干后加入PARMS Master Mix反应混合液(由武汉市景肽生物科技有限公司生产),反应体系见表3。

表3

PCR扩增在ABI 7500荧光定量PCR系统中完成,Touchdown PCR反应条件为:94℃预变性15分钟;第一步扩增反应,94℃变性20秒,65℃~57℃退火并延伸60秒,10个循环,每个循环退火及延伸的温度降低0.8℃;第二步扩增反应,94℃变性20秒,57℃退火并延伸60秒,32个循环。PCR反应完成后进行荧光数据读取,荧光数据的结果转化成图形。若GW5-M1检测为HEX荧光,判定测试的水稻样品为纯合的窄粒型GW5基因型;若GW5-M1检测为FAM荧光,判定测试的水稻样品为纯合的宽粒型GW5基因型;若GW5-M1的多态位点同时检测到GW5-M1Fg、GW5-M1Ft,判断待测水稻为杂合的窄粒型GW5基因型。

4)自然群体验证

根据上述检测方法,用标记GW5-M1对含有GW5基因的92个水稻品种进行PARMS初筛反应验证,结果如表4所示,分型图如图4所示。

表4

由表4可以看出,携带窄粒型GW5基因品种在GW5-M1测试位点检测出HEX信号,如龙粳21、中科发5号;携带宽粒型GW5基因品种在GW5-M1测试位点检测出FAM信号,如秋田小町、辽开79;空白对照全部为阴性对照。GW5基因是东北稻区中影响粒型的主效基因,后续可以通过GW5基因定向改良水稻粒型,GW5-M1可用于水稻GW5基因分型的高效检测。

本发明的技术方案不限于上述具体实施例的限制,凡是根据本发明的技术方案做出的技术变形,均落入本发明的保护范围之内。

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