一种重组慢病毒载体、2019-nCoV假病毒及其制备和应用

技术领域

本发明涉及基因工程技术领域，特别是涉及一种重组慢病毒载体、2019-nCoV假病毒及其制备和应用。

背景技术

由于天然的病毒存在潜在的传染危险性以及其RNA分子的不稳定性，目前应用的质控品；例如cDNA、质粒DNA、裸露的RNA以及体外转录的RNA、灭活的病毒颗粒，都难以达到试验要求，所以研制稳定的、无生物传染性的质控物和标准品，不但对RNA病毒的RT-PCR检测，而且对商品化的病毒RT-PCR试剂盒的评价都具有重要意义。

病毒样颗粒(Virus like particle，VLP)是含有某种病毒的一个或多个结构蛋白的空心颗粒，不含病毒核酸，不能自主复制，但可以组装成颗粒样结构，其结构和抗原表位与天然的病毒颗粒十分相似，具有很强的免疫原性及很好的安全性。在体外通过特殊方法将病毒样颗粒与重组质粒DNA融合，转录成的重组RNA包入病毒样颗粒内，即形成假病毒(pseudovirus)。假病毒具有模拟真病毒结构、能够抵抗核酸酶降解、稳定、安全性高等优点，给目前RNA病毒检测研究工作提供了一种强有力的工具。

利用野生型病毒株研究病毒的生物学特性及其与宿主细胞相互作用的机制是病毒学领域常用的研究方法，但前提条件是此类病毒能够在体外培养，且传染性和致病性低，对人身安全和环境不构成威胁。对于一些传染性强、致死率高，体外培养难以获得，且需在高级别生物安全实验室操作的病毒，如SARS-CoV-2(2019-nCoV)、SARS-CoV及MERS-CoV均为高致病性冠状病毒，针对这3种病毒的实验操作需要在具备相应资质的生物安全三级实验室内开展，这成为制约药物和疫苗研发的瓶颈。基于反转录病毒或HIV骨架的假病毒可在较大程度上替代真病毒进行药物筛选(限于阻止病毒侵入细胞的药物)和疫苗评价，具有较高安全性且检测方便。但影响假病毒包装效率的因素很多，包括包装骨架质粒的结构、病毒包膜蛋白的表达水平、转染前细胞的生长状态、包装质粒组合比例、质粒转染效率、细胞培养液的血清含量、假病毒上清的收集时间等多种因素。

由于新冠病毒的核酸序列约29kb～30kb，而慢病毒载体一般只能容纳不超过4kb的外源基因序列。如果要把所有的新冠病毒序列都克隆到慢病毒载体里做成假病毒，需要分成7-8个克隆，工作量特别大，且会带来一系列效率低、纯度低的缺陷。

发明内容

基于此，本发明的目的之一在于提供一种重组慢病毒载体。

具体技术方案如下：

一种重组病毒载体，所述重组慢病毒载体以pCDH-CMV-MCS-EF1-puro为骨架，通过剔除其元件：CMV promoter、EF1a promoter、puroR抗性基因和WPRE，并以linker序列连接组装而成。

在其中的一些实施例中，上述linker序列如SEQ ID NO.1所示；或为与SEQ IDNO.1完全互补配对的序列，或为如SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或添加一个或多个核苷酸，且能编码相同功能蛋白质的核苷酸序列。

本发明的目的之一还在于提供一种上述重组慢病毒载体在假病毒制备中的应用。

本发明的目的之一还在于提供一种假病毒的制备方法。

实现上述目的的技术方案如下：

(1)构建权上述重组慢病毒载体pLVmini-MCS；

(2)将病毒的核酸片段克隆至重组慢病毒载体pLVmini-MCS，获得重组表达质粒；

(3)将上述重组表达质粒、假病毒包装质粒和包膜质粒共同转染至细胞后进行假病毒颗粒的包装，获得假病毒颗粒。

在其中的一些实施例中，上述步骤(3)中的假病毒包装质粒选自pCMV-Gag-Pol、pRSV-Rev、pCMV-dR8.91、psPAX2、pMDLg/pRRE、pLP1或pNL4-3；上述假病毒包膜质粒选自pMD2.G、pCMV-VSV-G、pLPVSV-G或pVSV-G。

在其中的一些实施例中，上述病毒是SARS-CoV-2，所述SARS-CoV-2的核酸片段分别为SEQ ID NO.4～SEQ ID NO.9所示序列，将SEQ ID NO.4～SEQ ID NO.9分别通过分成两段扩增，并利用同源重组，将其克隆至重组慢病毒载体pLVmini-MCS。

本发明的目的之一还在于提供一种SARS-CoV-2假病毒。

实现上述目的的技术方案如下：

一种SARS-CoV-2假病毒，所述SARS-CoV-2假病毒为将SARS-CoV-2核酸片段克隆至上述任一项重组慢病毒载体，进行转染包装后获得。

在其中的一些实施例中，上述SARS-CoV-2核酸片段序列为SEQ ID NO.4、SEQ IDNO.5、SEQ ID NO.6、SEQ ID NO.7、SEQ ID NO.8或SEQ ID NO.9。

本发明的目的之一还在于提供一种SARS-CoV-2假病毒标准品。

实现上述目的的技术方案如下：

一种SARS-CoV-2假病毒标准品，所述SARS-CoV-2假病毒标准品为将如SEQ IDNO.4～SEQ ID NO.9所示核酸片段中的至少两个分别克隆至重组慢病毒载体pLVmini-MCS，获得重组表达质粒后共转染至293T细胞而得到。

本发明的目的之一还在于提供一种SARS-CoV-2假病毒标准品在SARS-CoV-2疫苗和/或检测试剂制备中的应用。

与现有技术相比，本发明具有以下有益效果：

本发明的发明人通过对慢病毒骨架改造，形成新型病毒表达载体，其大小较原始骨架缩小约十分之三，从而可有效提高慢病毒骨架插入外源基因的容量。将其应用于假病毒的制备中，在此基础上建立的SARS-CoV-2假病毒，可降低其生物安全风险、提高效率的同时节省了制备时间以及人力成本；采用本发明制备得到的SARS-CoV-2假病毒无致病性，具有安全性好，制备效率高，纯度高，且质控方法准确可靠等特性，可长期稳定大量制备，为后续临床广泛应用提供良好基础。

附图说明

图1为实施例1中慢病毒载体pCDH-CMV-MCS-EF1-puro的酶切产物电泳图。

图2为实施例1中linker片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图3为实施例1中重组慢病毒载体pLVmini-MCS构建图。

图4为实施例2中2019-coV-1-I-A、2019-coV-1-I-B和2019-coV-1-II-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图5为实施例2中2019-coV-1-II-A片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图6为实施例2中2019-coV-1-III-A和2019-coV-1-III-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图7为实施例2中2019-coV-1-IV-A片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图8为实施例2中2019-coV-1-IV-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图9为实施例2中2019-coV-1-V-A片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图10为实施例2中2019-coV-1-V-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图11为实施例2中2019-coV-1-VI-A片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图12为实施例2中2019-coV-1-VI-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图13为实施例2中重组慢病毒载体pLVmini-MCS酶切后的琼脂糖凝胶电泳结果图。

图14为实施例2中显微镜100x下293T细胞转染前及SARS-CoV-2假病毒转染后的细胞状态对比图。

图15为实施例3中显微镜100x下293T细胞转染前及分别转染1μl、5μl、10μl的SARS-CoV-2假病毒并培养48h后的细胞状态对比图。

图16为实施例3中SARS-CoV-2假病毒QPCR检测程序。

图17为实施例3中QPCR检测的溶解曲线。

图18为实施例3中QPCR检测的内参标准曲线。

图19为实施例3中SARS-CoV-2假病毒QPCR检测的标准曲线。

具体实施方式

为了便于理解本发明，下面将对本发明进行更全面的描述。本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明公开内容的理解更加透彻全面。

下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如Sambrook等人，分子克隆：实验室手册(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。实施例中所用到的各种常用化学试剂，均为市售产品。

除非另有定义，本发明所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同。本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不用于限制本发明。本发明所使用的术语“和/或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。

在整个说明书和权利要求书中，以下术语具有与本文明确相关的含义，除非上下文另有明确规定。在本发明中使用的短语“在一个实施方案中”不一定指代相同的实施方案，尽管其可能是。此外，在本发明中使用的短语“在另一实施方案中”不一定指代不同的实施方案，尽管其可能是。因此，如下所述，可以容易地组合本发明的各个实施方案，而不脱离本发明的范围或精神。

此外，如本发明所使用的，术语“或”是包含性的“或”符号，并且等同于术语“和/或”，除非上下文另有明确规定。术语“基于”不是排他性的，并且允许基于未描述的其他因素，除非上下文另有明确规定。此外，在整个说明书中，“一个”、“一种”和“所述/该”的含义包括复数指示物。“在......中”中的含义包括“在......中”和“在......上”。

以下结合具体实施例对本发明作进一步详细的说明。

实施例1重组慢病毒载体pLVmini-MCS构建

通过将慢病毒载体pCDH-CMV-MCS-EF1-puro(7403bp)骨架上的BcuI和KpnI进行酶切去除慢病毒骨架上的CMV promoter、EF1a promoter、puroR抗性基因、WPRE元件，具体步骤如下：

表1-1酶切体系

37℃酶切1h，跑胶回收，鉴定，检测结果如图1所示。

通过设计linker序列合成组装到慢病毒骨架中的MCS区域，保留MCS区域的常用酶切位点。具体步骤如下：

linker序列(两端分别设计并添加酶切位点，EcoRI、BamHI，122bp):

actagtattatgcccagtacatgaccttatgggactttcctacttggcagtacatctacgtattagtcatcgcta ttaccatgtctagacccggggctagcgaattcgacggatccggtacc(SEQ ID NO.1)

linker引物序列:

linker-T5F:acaaattacaaaattcaaaattttatcgatactagtattatgcccagtacatgac(SEQ ID NO.2)

linker-T5R:acagctgccttgtaagtcattggtcttaaaggtaccggatccgtcgaattcgct(SEQID NO.3)

表1-2扩增程序

PCR产物纯化，回收，琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图2所示。将得到的linker序列组装到慢病毒骨架中的MCS区域，具体组装步骤体系配制及程序参考试剂盒IGE-2×T5Mix，说明书P301-S3(广州艾基生物技术有限公司)。从而得到改造后的质粒pLVmini-MCS(5376bp)，其具体构建图如图3所示。

实施例2SARS-CoV-2假病毒制备

从数据库中下载SARS-CoV-2核酸序列SEQ ID NO.4-SEQ ID NO.9具体序列如下，并在序列两端分别添加酶切位点(5’端EcoRI，GAATTC和3’端BamHI，GGATCC)，对应得到序列：2019-coV-1-I序列(5065bp，包含ORF1ab序列)、2019-coV-1-II序列(5143bp，包含ORF1ab序列)、2019-coV-1-III序列(5142bp，包含ORF1ab序列和mature peptide序列)、2019-coV-1-IV序列(5141bp，包含mature peptide序列)、2019-coV-1-V序列(5040bp，序列包含S protein序列)和2019-coV-1-VI序列(4302bp，序列包含E、M、Nprotein序列)。

其中，2019-coV-1-I分成I-A(2560bp)、I-B(2601bp)两段扩增；2019-coV-1-II分成II-A(2610bp)、II-B(2703bp)两段扩增；2019-coV-1-III分成III-A(2652bp)、III-B(2670bp)两段扩增；2019-coV-1-IV分成IV-A(2650bp)、IV-B(2681bp)两段扩增；2019-coV-1-V分成V-A(1250bp)、V-B(4099bp)两段扩增；2019-coV-1-VI分成VI-A(1110bp)、VI-B(3389bp)两段扩增。

其中引物序列如下表2-1所示：

表2-1

上述6个2019-coV基因的各自A、B两段扩增程序分别参考如下：

表2-2

表2-3

PCR产物纯化，琼脂糖凝胶电泳检测，2019-coV-1-I-A、2019-coV-1-I-B和2019-coV-1-II-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果如图4所示；2019-coV-1-II-A片段的琼脂糖凝胶电泳结果如图5所示；2019-coV-1-III-A和2019-coV-1-III-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果如图6所示；2019-coV-1-IV-A、2019-coV-1-IV-B、2019-coV-1-V-A、2019-coV-1-V-B、2019-coV-1-VI-A、2019-coV-1-VI-B片段的琼脂糖凝胶电泳结果如图7-12所示。

将本发明改造的慢病毒载体pLVmini-MCS按照下表体系酶切：

表2-4载体酶切

37℃酶切1h，跑胶回收，鉴定，胶图如图6所示。

连接

通过引物的设计使2019-nCoV的基因序列A、基因序列B以及线性化的载体质粒两端具有至少50bp的overlap片段区域，以慢病毒表达载体质粒pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-V制备为例，按以下表2-5所示体系加入各组分，50℃连接30min。

表2-5

将同源重组反应后的混合液加入到感受态细胞中进行转化；于氨苄青霉素抗性的细菌培养平板上筛选单克隆；于含有氨苄青霉素抗性的2xYT培养基中扩大培养单克隆，扩增pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-V质粒；

单克隆进行质粒提取后在琼脂糖凝胶电泳上验证pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-V构建成功。并将克隆提取质粒在生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序验证，得到慢病毒表达载体质粒pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-V。

按照上述方法建立关于新冠病毒另5个片段的慢病毒表达质粒，分别得到pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-I、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-II、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-III、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-IV、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-VI。

将上述6个去内毒质粒及辅助质粒共转染293T细胞，其中具体质量比为慢病毒表达质粒用量(pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-I、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-II、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-III、pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-IV和pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-VI)：PsPAX：PMD2G＝10：9：6，72h后观察到正常细胞中产生病变细胞，其中病变细胞膨大、变圆、变亮，与常规死亡细胞相比，存在明显差异，易于区分，具体如图7所示。

实施例3SARS-CoV-2假病毒性能验证

将SARS-CoV-2假病毒表达质粒pLVmini-MCS-2019-nCoV-1-V及空载体分别转染293T细胞，48小时后收集细胞样本并进行病毒浓缩纯化，具体步骤如下；

1)转染293T细胞48小时后，收集含有病毒的培养液(约30mL)至50mL离心管中；

2)4℃、3000rpm离心15分钟，低速离心病毒上清，去除细胞碎片，回收上清；

3)将48小时收集的病毒上清液用0.45μm的滤器过滤至50mL离心管；

4)加入6ml 50％的PEG浓缩液。充分均匀混合液，静置放置于4℃沉淀过夜；

5)次日4℃、1500×g离心30分钟后倒掉上清，再进行4℃、1500×g离心4分钟；

6)用移液枪吸除多余上清，然后用0.5mL HBSS溶解病毒沉淀，用200μL枪头缓慢而充分地吹打沉淀至形成单个病毒悬液；

7)按照每管200μL病毒液分装到0.5mL冻存管中。

分别使用上述1μl、5μl、10μl的浓缩纯化后的慢病毒转染293T细胞，48h后观察细胞的转染情况，结果如图8所示。

分别提取上述转染病毒的293T细胞的RNA，通过Q-PCR的方法(检测慢病毒载体ITR保守区及细胞DNA上的内参基因，确定慢病毒的拷贝数)进行滴度检测，确定病毒的转染效果，具体步骤如下：

1、DNaseI处理样品：

1)在每含有0.5μg模板DNA的反转录反应体系中加入1U DNase I，或1mL浓缩病毒液加入25-35ul DNase I处理。

2)37℃孵育20-30min。

2、样品的Q-PCR检测：

qPCR具体引物

病毒基因

U5-F：ACAGATGCGTAAGGAGAAAATACC(SEQ ID NO.34)

U5-R：TTGTCTACAGCCTTCTGATGTTTC(SEQ ID NO.35)

内参基因

ALB-F：ATGCTGAGGCAAAGGATGTC(SEQ ID NO.36)

ALB-R：TTGGCTTTACACCAACGAAA(SEQ ID NO.37)

表3-1反应体系

反应程序如图9所示，检测溶解曲线如图10所示，图中分别仅有内参和SARS-CoV-2假病毒基因两个主峰，无其他杂峰出现；同时得到内参的标准曲线和SARS-CoV-2假病毒基因的标准曲线分别如图11、12所示，通过两个标曲分别获得样品内参基因和病毒基因的拷贝数，然后根据下列公式计算换算确定样品的病毒滴度。具体各组样品的检测滴度结果如下表3-2所示：

表3-2

通过上述样品滴度检测结果可知，由于本发明采用的空载体较小，出毒量大，因此通过本发明制备得到的SARS-CoV-2假病毒滴度可达到9次方。采用本发明重组慢病毒载体并通过实施例2所述假病毒的制备方法所制备得到的SARS-CoV-2假病毒，其制备效率及纯度均得到有效保障。

以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合，为使描述简洁，未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述，然而，只要这些技术特征的组合不存在矛盾，都应当认为是本说明书记载的范围。

以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

序列表

<110> 广州金泰生物科技有限公司

广州艾基生物技术有限公司

<120> 一种重组慢病毒载体、2019-nCoV假病毒及其制备和应用

<160> 37

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 122

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<400> 1

actagtatta tgcccagtac atgaccttat gggactttcc tacttggcag tacatctacg 60

tattagtcat cgctattacc atgtctagac ccggggctag cgaattcgac ggatccggta 120

cc 122

<210> 2

<211> 55

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<400> 2

acaaattaca aaattcaaaa ttttatcgat actagtatta tgcccagtac atgac 55

<210> 3

<211> 54

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<400> 3

acagctgcct tgtaagtcat tggtcttaaa ggtaccggat ccgtcgaatt cgct 54

<210> 4

<211> 5053

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<400> 4

atggagagcc ttgtccctgg tttcaacgag aaaacacacg tccaactcag tttgcctgtt 60

ttacaggttc gcgacgtgct cgtacgtggc tttggagact ccgtggagga ggtcttatca 120

gaggcacgtc aacatcttaa agatggcact tgtggcttag tagaagttga aaaaggcgtt 180

ttgcctcaac ttgaacagcc ctatgtgttc atcaaacgtt cggatgctcg aactgcacct 240

catggtcatg ttatggttga gctggtagca gaactcgaag gcattcagta cggtcgtagt 300

ggtgagacac ttggtgtcct tgtccctcat gtgggcgaaa taccagtggc ttaccgcaag 360

gttcttcttc gtaagaacgg taataaagga gctggtggcc atagttacgg cgccgatcta 420

aagtcatttg acttaggcga cgagcttggc actgatcctt atgaagattt tcaagaaaac 480

tggaacacta aacatagcag tggtgttacc cgtgaactca tgcgtgagct taacggaggg 540

gcatacactc gctatgtcga taacaacttc tgtggccctg atggctaccc tcttgagtgc 600

attaaagacc ttctagcacg tgctggtaaa gcttcatgca ctttgtccga acaactggac 660

tttattgaca ctaagagggg tgtatactgc tgccgtgaac atgagcatga aattgcttgg 720

tacacggaac gttctgaaaa gagctatgaa ttgcagacac cttttgaaat taaattggca 780

aagaaatttg acaccttcaa tggggaatgt ccaaattttg tatttccctt aaattccata 840

atcaagacta ttcaaccaag ggttgaaaag aaaaagcttg atggctttat gggtagaatt 900

cgatctgtct atccagttgc gtcaccaaat gaatgcaacc aaatgtgcct ttcaactctc 960

atgaagtgtg atcattgtgg tgaaacttca tggcagacgg gcgattttgt taaagccact 1020

tgcgaatttt gtggcactga gaatttgact aaagaaggtg ccactacttg tggttactta 1080

ccccaaaatg ctgttgttaa aatttattgt ccagcatgtc acaattcaga agtaggacct 1140

gagcatagtc ttgccgaata ccataatgaa tctggcttga aaaccattct tcgtaagggt 1200

ggtcgcacta ttgcctttgg aggctgtgtg ttctcttatg ttggttgcca taacaagtgt 1260

gcctattggg ttccacgtgc tagcgctaac ataggttgta accatacagg tgttgttgga 1320

gaaggttccg aaggtcttaa tgacaacctt cttgaaatac tccaaaaaga gaaagtcaac 1380

atcaatattg ttggtgactt taaacttaat gaagagatcg ccattatttt ggcatctttt 1440

tctgcttcca caagtgcttt tgtggaaact gtgaaaggtt tggattataa agcattcaaa 1500

caaattgttg aatcctgtgg taattttaaa gttacaaaag gaaaagctaa aaaaggtgcc 1560

tggaatattg gtgaacagaa atcaatactg agtcctcttt atgcatttgc atcagaggct 1620

gctcgtgttg tacgatcaat tttctcccgc actcttgaaa ctgctcaaaa ttctgtgcgt 1680

gttttacaga aggccgctat aacaatacta gatggaattt cacagtattc actgagactc 1740

attgatgcta tgatgttcac atctgatttg gctactaaca atctagttgt aatggcctac 1800

attacaggtg gtgttgttca gttgacttcg cagtggctaa ctaacatctt tggcactgtt 1860

tatgaaaaac tcaaacccgt ccttgattgg cttgaagaga agtttaagga aggtgtagag 1920

tttcttagag acggttggga aattgttaaa tttatctcaa cctgtgcttg tgaaattgtc 1980

ggtggacaaa ttgtcacctg tgcaaaggaa attaaggaga gtgttcagac attctttaag 2040

cttgtaaata aatttttggc tttgtgtgct gactctatca ttattggtgg agctaaactt 2100

aaagccttga atttaggtga aacatttgtc acgcactcaa agggattgta cagaaagtgt 2160

gttaaatcca gagaagaaac tggcctactc atgcctctaa aagccccaaa agaaattatc 2220

ttcttagagg gagaaacact tcccacagaa gtgttaacag aggaagttgt cttgaaaact 2280

ggtgatttac aaccattaga acaacctact agtgaagctg ttgaagctcc attggttggt 2340

acaccagttt gtattaacgg gcttatgttg ctcgaaatca aagacacaga aaagtactgt 2400

gcccttgcac ctaatatgat ggtaacaaac aataccttca cactcaaagg cggtgcacca 2460

acaaaggtta cttttggtga tgacactgtg atagaagtgc aaggttacaa gagtgtgaat 2520

atcacttttg aacttgatga aaggattgat aaagtactta atgagaagtg ctctgcctat 2580

acagttgaac tcggtacaga agtaaatgag ttcgcctgtg ttgtggcaga tgctgtcata 2640

aaaactttgc aaccagtatc tgaattactt acaccactgg gcattgattt agatgagtgg 2700

agtatggcta catactactt atttgatgag tctggtgagt ttaaattggc ttcacatatg 2760

tattgttctt tctaccctcc agatgaggat gaagaagaag gtgattgtga agaagaagag 2820

tttgagccat caactcaata tgagtatggt actgaagatg attaccaagg taaacctttg 2880

gaatttggtg ccacttctgc tgctcttcaa cctgaagaag agcaagaaga agattggtta 2940

gatgatgata gtcaacaaac tgttggtcaa caagacggca gtgaggacaa tcagacaact 3000

actattcaaa caattgttga ggttcaacct caattagaga tggaacttac accagttgtt 3060

cagactattg aagtgaatag ttttagtggt tatttaaaac ttactgacaa tgtatacatt 3120

aaaaatgcag acattgtgga agaagctaaa aaggtaaaac caacagtggt tgttaatgca 3180

gccaatgttt accttaaaca tggaggaggt gttgcaggag ccttaaataa ggctactaac 3240

aatgccatgc aagttgaatc tgatgattac atagctacta atggaccact taaagtgggt 3300

ggtagttgtg ttttaagcgg acacaatctt gctaaacact gtcttcatgt tgtcggccca 3360

aatgttaaca aaggtgaaga cattcaactt cttaagagtg cttatgaaaa ttttaatcag 3420

cacgaagttc tacttgcacc attattatca gctggtattt ttggtgctga ccctatacat 3480

tctttaagag tttgtgtaga tactgttcgc acaaatgtct acttagctgt ctttgataaa 3540

aatctctatg acaaacttgt ttcaagcttt ttggaaatga agagtgaaaa gcaagttgaa 3600

caaaagatcg ctgagattcc taaagaggaa gttaagccat ttataactga aagtaaacct 3660

tcagttgaac agagaaaaca agatgataag aaaatcaaag cttgtgttga agaagttaca 3720

acaactctgg aagaaactaa gttcctcaca gaaaacttgt tactttatat tgacattaat 3780

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<210> 8

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<212> DNA

<213> Artificial Sequence

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<212> DNA

<213> Artificial Sequence

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