一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记、引物及应用

技术领域

本发明属于分子生物技术领域，具体为一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记，检测该分子标记的引物序列及在农作物选育方面的应用。

背景技术

大白菜(Brassica rapa L.ssp.Pekinensis)属于十字花科芸薹属蔬菜作物，在我国蔬菜生产和供应中占有重要地位。亮绿性状是一种表皮蜡质缺陷突变体，是花茎和叶片等组织的表皮缺乏蜡质所致。对于大白菜等叶用蔬菜作物特别是白菜薹品种，蜡粉是重要的商品性状，例如市场更青睐无蜡粉薹叶和亮绿花茎的薹用白菜。

目前，拟南芥等植物中蜡粉形成的生理生化和分子调控机制研究已经取得了一定进展。植物表皮蜡粉在表皮细胞内合成，其过程主要包括：脂肪酸在质体中从头合成C16和C18脂肪酸，随后转运到内质网上延伸为C20～C36的超长链脂肪酸，进一步通过醇合成途径和烷烃合成途径合成不同的蜡粉组分。CER1、CER2、CER3、MAH1、KCR1、RST1、WSD1、KCS和CYTB5等基因参与拟南芥蜡粉生物合成的不同途径(Zhao&Kunst，2016；Ni et al.，2018)。蜡粉合成后通过一系列转运蛋白经细胞膜和细胞壁外泌至角质层，主要有ACBP1、ABCG11、ABCG12、LTPG1、LTPG2和GNL1等基因参与(Kim，2012；Xue et al.，2014)。另外，WIN1/SHINE1、SHINE2、SHINE3、MYB30、MYB94、MYB96、DEWAX、WAR6/RDR6、HUB1等基因在转录水平、转录后水平或翻译水平调控蜡粉合成过程(Lee et al.，2016；Park et al.，2016)。

芸薹属作物无蜡粉亮绿性状遗传规律较为复杂，不同群体间差异较大，且由不同的基因控制。本研究以大白菜自交系‘06-247’(无蜡粉材料)和‘He102’(无蜡粉材料)为亲本，构建了一个蜡粉变化有关的重组自交系(RILs)群体。该重组自交系群体的双亲均为无蜡粉材料，其F2代无蜡粉/有蜡粉单株的分离比为9/7，表明控制群体蜡粉性状是两对显性基因，加性效应分析表明两个基因分别来自不同的亲本。通过对双亲进行重测序和150个RILs进行简化基因组测序，开发了大量的InDels标记，构建了高密度的遗传连锁图谱(Liuet al.，2019)，共鉴定到2个效应值较大的基因。其中一个基因与Zhang等(2013)定位的BrWAX1相同，即与拟南芥蜡粉合成基因CER2的同源基因Bra013809。本研究在对双亲中的蜡粉合成基因CER2进行了克隆测序，发现了两者序列存在较多差异，在基因内部开发了InDel标记，该标记的应用将会加速亮绿大白菜新品种的育种效率。

发明内容

为了解决上述背景技术中提出的问题，本发明的目的在于提供一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记、引物及应用。

为实现上述目的，本发明提供如下技术方案：

本发明第一方面，提供一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记，所述InDel标记如SEQID NO:3和SEQID NO:4所示。

本发明第二方面，提供一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关InDel标记的检测引物，所述检测引物如下：

正向引物：CATAGGATTGAACAAATCCAGAAAC；

反向引物：CTGATTCTTGATGAACACTGACAAT。

进一步地，所述引物用于PCR扩增。

本发明第三方面，第一方面所述与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记和/或第二方面所述与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关InDel标记的检测引物在农作物选育方面的应用。

进一步地，所述应用包括通过所述检测引物或分子标记筛选大白菜显性纯合亲本材料。

进一步地，所述应用包括将所述检测引物用于制备检测试剂盒。

进一步地，所述应用包括将亮绿性状CER2突变体作为供体材料对其他十字花科芸薹属作物进行新品种选育。

进一步地，所述新品种选育包括筛选显性亮绿CER2突变体大白菜作为亲本材料与其他芸薹属作物进行杂交。

本发明第四方面，提供一种大白菜显性亮绿CER2突变体品种选育方法，所述选育方法包括采用第二方面所述扩增引物对亮绿性状CER2突变体基因型进行检测，筛选获得显性纯合个体作为亲本进行育种。

以上一个或多个技术方案的有益效果如下：

(1)所述显性亮绿突变体CER2可以作为亮绿性状的供体材料，用于对其它非亮绿型材料的花茎表皮进行改造，在菜心、菜薹、白菜苔育种中尤其有重要的用途，具有显著的经济意义。

(2)利用该标记检测重组自交系群体中的不同株系，明确了这些株系在该位点的基因型，通过相应的分子标记对该功能基因表达情况进行检测。该InDel标记可以对群体自交后代进行标记辅助选择，大大加速亮绿大白菜新品种的育种效率。

附图说明

图1是本发明实施例1中‘He102’相比‘06-247’在基因CER2内含子区发生缺失突变的示意图；

图2是本发明实施例1中InDel标记的开发电泳条带图；

其中，M:50bp ladder DNA分子量标准；P1：‘06-247’扩增产物；P2：‘He102’扩增产物。

图3是本发明实施例1中利用InDel标记对大白菜重组自交系部分群体检测的电泳条带图；

其中，1-60为重组自交系部分单株，M:50bp ladder DNA分子量标准；P1：‘06-247’扩增产物；P2：‘He102’扩增产物。

具体实施方式

下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。

实施例1

1、突变株的获得

大白菜自交系‘06-247’(无蜡粉材料)和‘He102’(无蜡粉材料)是山东省农业科学院大白菜课题组的育种材料，多年的田间性状调查于山东省农业科学院核心实验基地(济南)进行。

2、DNA提取

用TPS试剂提取、自动研磨仪研磨。TPS试剂配方：100mmol/L Tris-HCl，1mol/LKCl，10mmol/LEDTA，pH 8.0，高压灭菌。剪取2～3cm

3、引物设计

根据双亲重测序结果，比较亲本‘He102’相比‘06-247’在基因CER2区段的插入/缺失变异，如图1所示：‘He102’相比‘06-247’在基因CER2内含子区发生了1处27bp的缺失突变；

用Primer Premier 5.0软件在差异位点两侧保守区设计引物；正反向引物序列如SEQ ID NO:1和SEQID NO:2所示：

检测引物如下：

SEQ ID NO:1：CATAGGATTGAACAAATCCAGAAAC

SEQ ID NO:2：CTGATTCTTGATGAACACTGACAAT。

4、PCR扩增及检测

PCR扩增采用北京鼎国昌盛生物技术有限公司的2×Taq PCR Green Mix(PER007-1/PER007-2)。

PCR反应体系的配制：2×PCR mix 10μl,10pmol/L的正反向引物各1μl、20-50μg/L模板DNA 1μl、ddH

PCR反应条件为94℃、5min，94℃、20sec，59℃、20sec，72℃、10sec，30次循环，最终72℃延伸5min。PCR扩增产物在6％非变性聚丙烯酰胺凝胶上进行电泳，电泳结束后银染显色，智能手机拍照。电泳结果如图3所示。‘06-247’扩增产物片段大小191bp，序列如SEQ IDNO:3所示，‘He102’扩增产物片段大小为164bp，序列如SEQ ID NO:4所示。

SEQ ID NO:3

CATAGGATTGAACAAATCCAGAAACATTCTGTGGAAGAGTTAGGTGAGAGAAATTCTGTGGAAGAGTTAGGTGATCTCTTTAACAAATCCACAGTATTTTTTTGTTTGTTAGAGTTTAGTATGTTCTTGATAGTAACCGACAATTCAAGATCAGTGAAAGAAAAAAATTGTCAGTGTTCATCAAGAATCAG

SEQ ID NO:4

CATAGGATTGAACAAATCCAGAAACATTCTGTGGAAGAGTTAGGTGATCTCTTTAACAAATCCACAGTATTTTTTTGTTTGTTAGAGTTTAGTATGTTCTTGATAGTAACCGACAATTCAAGATCAGTGAAAGAAAAAAATTGTCAGTGTTCATCAAGAATCAG

5、重组自交系群体构建及重组自交系验证

以06-247为母本、He102为父本，盛花期母本人工挑蕾去雄、取父本花粉授粉后套袋使结荚，收获F1种子。所得F1代于蕾期人工辅助授粉使自交结实收获F2种子。自F2代开始单粒传至F7代，每个F7株系分别育5株苗，用Tris碱和氯化钾盐(potassium chloridesalt,TPS)试剂于自动研磨仪上提取DNA，用筛选到的InDels标记进行检测，记录杂合位点及相关单株编号，用于后续研究。利用InDel标记对大白菜重组自交系部分群体检测的电泳条带图，参照图3所示。

以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，对于本领域的技术人员来说，本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

序列表

<110> 山东省农业科学院

<120> 一种与大白菜亮绿性状基因CER2突变相关的InDel标记、引物及应用

<160> 4

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

cataggattg aacaaatcca gaaac 25

<210> 2

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

ctgattcttg atgaacactg acaat 25

<210> 3

<211> 191

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

cataggattg aacaaatcca gaaacattct gtggaagagt taggtgagag aaattctgtg 60

gaagagttag gtgatctctt taacaaatcc acagtatttt tttgtttgtt agagtttagt 120

atgttcttga tagtaaccga caattcaaga tcagtgaaag aaaaaaattg tcagtgttca 180

tcaagaatca g 191

<210> 4

<211> 164

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

cataggattg aacaaatcca gaaacattct gtggaagagt taggtgatct ctttaacaaa 60

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