一种含虾青素的抗氧化组合物及其应用

技术领域

本发明属于医药或化妆品原料领域，具体公开了一种含虾青素的抗氧化组合物及其应用。

背景技术

抗氧化(Anti-Oxidant)又称抗氧化自由基。人体因为与外界的持续接触，包括呼吸(氧化反应)、外界污染、放射线照射在内等因素不断在人体内产生自由基。科学研究表明，癌症、衰老或其它疾病大都与过量自由基的产生有关联。研究抗氧化可以有效克服其所带来的危害，所以抗氧化被保健品、化妆品企业列为主要的研发方向之一，也是市场最重要的功能性诉求之一。

抗氧化剂是指任何以低浓度存在就能有效抑制自由基的氧化反应的物质，其作用机理可以是直接作用在自由基，或是间接消耗掉容易生成自由基的物质，防止发生进一步反应。人体在不可避免地产生自由基的同时，也在自然产生着抵抗自由基的抗氧化物质，以抵消自由基对人体细胞的氧化攻击。研究证明，人体的抗氧化系统是一个可与免疫系统相比拟的、具有完善和复杂功能的系统，机体抗氧化的能力越强，就越健康，生命也越长。

人体的抗氧化物质有自身合成的，也有由食物供给的。酶和非酶抗氧化物质在保护由于运动引起的过氧化损伤中起至关重要的作用。补充植物活性硒增强抗氧化有利于运动机体减少自由基的产生或加速其清除，以对抗自由基的副作用。

现有抗氧化产品众多，但普遍存在以下一种或多种缺陷：原料众多，原料价格较高，需要多种的植物提取物，或者生长因子，制备过程复杂，成本高，同时上述专利中多含有维生素C和虾青素等不稳定的成分，稳定性不高，易氧化、见光易分解，因此多制备成凝胶产品，局限性大，保质期短，商业化困难，难以广泛的应用。

发明内容

为了解决上述问题，本发明公开了一种含虾青素的抗氧化组合物及其应用。原料成分明确，性质稳定，制备方便，易于保存，抗氧化能力强。

第一方面，本发明公开了一种含虾青素的抗氧化组合物，所述组合物包括维生素C、虾青素和精氨酸-赖氨酸多肽。

进一步的，按重量份数计，所述组合物包括0.01-0.5mM虾青素、0.1-2mM的维生素C，以及添加有占质量分数0.1-5％的10ppm的精氨酸-赖氨酸多肽溶液；

优选的，所述组合物包括0.1mM虾青素、0.5mM的维生素C，以及添加有占质量分数1％的10ppm的精氨酸-赖氨酸多肽溶液。

进一步的，所述组合物中还含有质量分数0.1-0.5％银耳多糖；

优选的，所述银耳多糖含量为0.25％。

维生素C表现出很强的还原性(抗氧化性)，极易溶于水，故极不稳定，遇热和氧化易被破坏，在中性和碱性溶液中，受光线、金属离子(铜、铁等)作用则会加快其破坏速度。氧化酶及某些含铜酶，如抗坏血酸氧化酶、多酚氧化酶、细胞色素氧化酶及过氧化物酶等都能催化维生素C的氧化破坏。发明人发现在上述组合物中添加若干份的银耳多糖可以增加维生素C的稳定性，增加组合物的抗氧化效果。

进一步的，本发明公开了上述抗氧化组合物在制备促进人皮肤成纤维细胞代谢的培养液中的用途。

另一方面，本发明公开了上述抗氧化组合物在制备改善皮肤老化的药品或化妆品中的用途。

进一步的，上述用途中，所述化妆品中还含有皮肤调理剂、保湿剂、防腐剂、增稠剂、乳化剂、稳定剂和pH值调节剂中的一种或多种。

进一步的，上述用途中，按质量分数计，所述化妆品中组合物的含量为1％～50％。

相比现有技术，本发明具有如下有益效果:

本发明公开了一种含虾青素的抗氧化组合物，原料组成简单，成分明确，发明人发现：“维生素C+虾青素+精氨酸-赖氨酸多肽”三元复合原料(ASTA-C-Pep)实验组能够显著提升细胞代谢活性水平，线粒体质量和线粒体ATP生成水平、且提升比例高于“维生素C+虾青素”二元复合原料(ASTA-C)组以及单用虾青素实验组，从而证实ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素更能够显著提升细胞代谢活性，激活保护细胞。同时发明人还发现，与模型对照组(MC)相比，ASTA-C-Pep三元复合原料实验组能够显著抑制线粒体超氧化物水平，且抑制比例高于ASTA-C二元复合原料组以及单用虾青素实验组，这证实了ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素，更能有效对抗线粒体ROS及氧化应激损伤，保护线粒体功能。

进一步的，本发明还发现，在上述ASTA-C-Pep(维生素C+虾青素+精氨酸-赖氨酸多肽)三元复合原料中加入一定量的银耳多糖，可以大大地提高上述三元复合原料的稳定性，保留其抗氧化能力，大大延长其保质期，非常易于商业化应用。

通过小鼠和临床试验，进一步的验证了本发明公开的ASTA-C-Pep以及ASTA-C-Pep+银耳多糖在改善皮肤含水率、HYP含量、HA含量、SOD活力方面相比对照组均有较大的提升，并且具有明显的美白功效。

附图说明

图1为实施例1细胞代谢活性中的检测分析柱状图；

图2为实施例2线粒体形态学检测中的检测分析柱状图；

图3为实施例3ATP能量生成中的检测分析柱状图；

图4为实施例4线粒体超氧化物水平检测分析柱状图；

图5为实施例5线粒体超氧化物水平检测中的细胞荧光图。

具体实施方式

下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其它实施例，都属于本发明保护的范围。

本发明实施例中使用的试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市购获得的常规试剂产品。

本发明所述的精氨酸-赖氨酸多肽是指含有精氨酸和赖氨酸的多肽，通常带有数量不等的正电荷。美国个人护理用品协会编号为9823，CAS编号为31014-78-5。

实施例1

细胞代谢活性

1.实验目的

通过成纤维细胞代谢活性检测实验，观察ASTA(虾青素)及其二元、三元复合原料产品的线粒体细胞代谢活性，激活保护细胞。

2.实验概述及原理

细胞活性是指样本中健康的活细胞数量。细胞活性检测用于测量细胞响应胞外刺激、化学试剂或疗法处理的物理和生理健康情况，或者用于确定细胞培养的最佳生长条件。

本实验在正常对照组(NC)基础上，采用过氧化氢(H

PrestoBlue细胞活力检测试剂是一种即用型溶液，利用具代谢活性细胞的还原能力来定量测量细胞活性，可作为细胞健康指标。PrestoBlue试剂中包含了一种细胞通透性的化合物刃天青(resazurin)，蓝色且几乎没有荧光。在加入细胞后，试剂被活细胞的还原环境所修饰，变成红色，且荧光很强，可在使用基于吸光度或荧光的酶标仪上检测到。这种检测试剂无毒，也不需要细胞裂解，因此，可去除试剂后替换为完全生长培养基，进行下一步细胞培养。

3.实验材料及设备

3.1.主要实验材料：ASTA(虾青素)、ASTA-C(虾青素+维生素C)、ASTA-C-Pep(虾青素+维生素C+精氨酸-赖氨酸多肽)、人皮肤成纤维细胞(HFF-1)、96孔板(Nest)、过氧化氢(Sigma-Aldrich)、FBS(Gibco)、青霉素-链霉素溶液(Biosharp)、PrestoBlue细胞活力检测试剂(Invitrogen)。

3.2.主要实验设备：超净台(Thermo Fisher Scientific)、倒置显微镜(BXP-1109)、二氧化碳培养箱(Thermo Fisher Scientific)、移液枪(Eppendorf ResearchPlus)、离心机(SC-D4)、多功能酶标仪(Perkin Elmer)。

4.实验方法

4.1.细胞接种：准备1块96孔板，将细胞接种于96孔板中(4×10

4.2.造模：孵育结束后，去培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次。正常对照组(NC)更换为新鲜培养基，模型对照组(MC)更换为新鲜培养基加H

表1：实验分组

注：上表中的0.1％、0.5％或1％等含量值为质量体积比，所述Pep为10ppm的精氨酸-赖氨酸多肽溶液。

4.3.检测：加入Prestoblue检测试剂，使用多功能酶标仪在OD570下检测其荧光强度。

4.4.数据分析：过氧化氢刺激模型下，细胞代谢活性增加率(％)＝{(模型样品组OD570–模型对照组(MC)OD570)/模型对照组(MC)OD570}×100％。

4.5.统计学分析：与NC对比，#p<0.05，##p<0.01，###p<0.001，####p<0.0001；与MC对比，*p<0.05，**p<0.01，***p<0.001，****p<0.0001；四次生物学重复(N＝4)。

5实验结果

结果见表2实验数据，以及附图1。

表2：实验数据

6.实验结论

与模型对照组(MC)相比，ASTA-C-Pep三元复合原料实验组能够显著提升细胞代谢活性水平，且提升比例高于ASTA-C二元复合原料组以及单用虾青素实验组。证实ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素更能够显著提升细胞代谢活性，激活保护细胞。

实施例2

线粒体形态学检测

1.实验目的

通过成纤维细胞线粒体超氧化物水平检测实验，观察ASTA及其二元、三元复合原料产品对线粒体质量的提升作用，进而改善线粒体质量控制，维护线粒体状态及功能完整性，提升细胞活力的能力。

2.实验概述及原理

线粒体(Mitochondrion)是一种存在于大多数细胞中的由两层膜包被的细胞器，是细胞中制造能量的结构，是细胞进行有氧呼吸的主要场所。活细胞中线粒体形态学及线粒体质量控制直接影响ATP稳态和细胞功能，在细胞的生理和病理过程中扮演了十分重要的角色。

本实验在正常对照组(NC)及采用过氧化氢(H

MitoTracker Green FM是线粒体绿色荧光探针，该染料在线粒体中的定位并不受线粒体膜电位的影响。MitoTracker Green FM可以染活细胞，但在醛类固定剂固定之后，会导致荧光信号丢失。通过观察试剂产生的明亮绿色荧光，可以分析线粒体形态学各项指标，如线粒体质量、线粒体个体数量、线粒体网络及线粒体覆盖区域等变化。

3.实验材料及设备

3.1.主要实验材料：ASTA、ASTA-C、ASTA-C-Pep、人皮肤成纤维细胞(HFF-1)、96孔板(Nest)、过氧化氢(Sigma-Aldrich)、FBS(Gibco)、青霉素-链霉素溶液(Biosharp)、MitoTracker GreenFM线粒体绿色荧光探针试剂(Thermo Fisher)。

3.2.主要实验设备：超净台(Thermo Fisher Scientific)、倒置显微镜(BXP-1109)、二氧化碳培养箱(Thermo Fisher Scientific)、移液枪(Eppendorf ResearchPlus)、离心机(SC-D4)、高内涵细胞成像分析仪(Molecular Devices)。

4.实验方法

4.1.细胞接种：准备1块96孔板，将细胞接种于96孔板中(4×10

4.2.造模：孵育结束后，去培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次。正常对照组(NC)更换为新鲜培养基，模型对照组(MC)更换为新鲜培养基加H

表3实验分组

4.3.检测：

去除原培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次，加入不含胎牛的新鲜培养基100μL，加入MitoTracker Green FM线粒体绿色荧光探针试剂,培养箱内孵育30min后，通过荧光显微镜分析线粒体形态学变化。

4.4.数据分析：

正常样品组线粒体质量增加率(％)＝{(正常样品组线粒体质量–正常对照组(NC)线粒体质量)/正常对照组(NC)线粒体质量}×100％；

模型样品组线粒体数量增加率(％)＝{(模型样品组线粒体质量–模型对照组(MC)线粒体质量)/模型对照组(MC)线粒体质量}×100％；

正常样品组线粒体个体数量增加率(％)＝{(正常样品组线粒体个体数量–正常对照组(NC)线粒体个体数量)/正常对照组(NC)线粒体个体数量}×100％；

模型样品组线粒体个体数量增加率(％)＝{(模型样品组线粒体个体数量–模型对照组(MC)线粒体个体数量)/模型对照组(MC)线粒体个体数量}×100％；

正常样品组线粒体网络增加率(％)＝{(正常样品组线粒体网络–正常对照组(NC)线粒体网络)/正常对照组(NC)线粒体网络}×100％；

模型样品组线粒体网络增加率(％)＝{(模型样品组线粒体网络–模型对照组(MC)线粒体网络)/模型对照组(MC)线粒体网络}×100％；

正常样品组线粒体覆盖区域增加率(％)＝{(正常样品组线粒体覆盖区域–正常对照组(NC)线粒体覆盖区域)/正常对照组(NC)线粒体覆盖区域}×100％；

模型样品组线粒体覆盖区域增加率(％)＝{(模型样品组线粒体覆盖区域–模型对照组(MC)线粒体覆盖区域)/模型对照组(MC)线粒体覆盖区域}×100％。

4.5.统计学分析：

与NC对比，#p<0.05，##p<0.01，###p<0.001，####p<0.0001；与MC对比，*p<0.05，**p<0.01，***p<0.001，****p<0.0001；四次生物学重复(N＝4)。

5.实验结果

实验结果见表4以及附图2。

表4实验数据

6.实验结论

与模型对照组(MC)相比，ASTA-C-Pep三元复合原料实验组也能够显著提升线粒体质量，且提升比例高于ASTA-C二元复合原料组以及单用虾青素实验组。证实ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素，更能显著提升线粒体质量，改善线粒体动力学及质量控制，维护线粒体状态及功能完整性，提升细胞活力。

实施例3

ATP能量生成检测

1.实验目的

通过成纤维细胞线粒体ATP能量生成检测实验，观察ASTA及其二元、三元复合原料产品对线粒体及细胞的赋能激活能力。

2.实验概述及原理

三磷酸腺苷(ATP)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，是一种仅在线粒体内形成的三磷酸核苷。ATP是一种高能分子，被称为所有生命系统的能量货币，作为最重要的能量分子，在细胞的各种生理、病理过程中起着重要作用，可作为主要供能物质参与体内的许多代谢反应。通常细胞在凋亡、坏死或处于一些毒性状态下，ATP水平会下降；而高葡萄糖刺激等可上调某些细胞的细胞内ATP水平。ATP水平可直接反应线粒体功能，通常ATP水平的下降表明线粒体的功能受损或下降，在细胞凋亡时ATP水平的下降通常和线粒体的膜电位下降同时发生。ATP水平升高可证实显著提高并保护线粒体活力、新陈代谢水平及耗氧率，进而显著提高细胞能量与活力。

本实验在正常对照组(NC)基础上，采用过氧化氢(H

3.实验材料及设备

3.1.主要实验材料：ASTA、ASTA-C、ASTA-C-Pep、人皮肤成纤维细胞(HFF-1)、96孔板(Nest)、过氧化氢(Sigma-Aldrich)、FBS(Gibco)、青霉素-链霉素溶液(Biosharp)、增强型ATP试剂盒(Beyotime)、BCA蛋白浓度测定试剂盒(Biosharp)。

3.2.主要实验设备：超净台(Thermo Fisher Scientific)、倒置显微镜(BXP-1109)、二氧化碳培养箱(Thermo Fisher Scientific)、移液枪(Eppendorf ResearchPlus)、离心机(SC-D4)、冷冻离心机(Neofuge 13R)、多功能酶标仪(Perkin Elmer)。

4.实验方法

4.1.细胞接种：准备1块96孔板，将细胞接种于96孔板中(4×10

4.2.造模：孵育结束后，去培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次。正常对照组(NC)更换为新鲜培养基，模型对照组(MC)更换为新鲜培养基加H

表5：实验分组

4.3.检测：

去除原培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次，弃去PBS后每孔加入细胞裂解液200μL裂解细胞，离心后取100μL上清液待测定。严格按照制造商的建议配制ATP检测工作液，制作ATP标准曲线，多功能酶标仪检测待测样品ATP含量，BCA蛋白校准。

4.4.数据分析：

过氧化氢刺激模型下，ATP水平增加率(％)＝{(模型样品组ATP值–模型对照组(MC)ATP值)/模型对照组(MC)ATP值}×100％。

4.5.统计学分析：

与NC对比，#p<0.05，##p<0.01，###p<0.001，####p<0.0001；与MC对比，*p<0.05，**p<0.01，***p<0.001，****p<0.0001；四次生物学重复(N＝4)。

5.实验结果

实验结果见表6以及附图3。

表6：实验数据

6.实验结论

与模型对照组(MC)相比，ASTA-C-Pep三元复合原料实验组也能够显著提升线粒体ATP生成水平，且提升比例高于ASTA-C二元复合原料组以及单用虾青素实验组。证实ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素，更能有效促进线粒体ATP能量生成，提高并保护线粒体活力、新陈代谢水平及耗氧率，进而显著提高细胞能量与活力。

实施例4

线粒体超氧化物水平检测

1.实验目的

通过成纤维细胞线粒体超氧化物水平检测实验，观察ASTA及其二元、三元复合原料产品对线粒体功能保护及对抗ROS氧化应激的能力。

2.实验概述及原理

线粒体已经被广泛认为是细胞活性氧(ROS)产生的最主要来源，细胞内超氧化物水平过高会直接导致线粒体氧化应激损伤及功能障碍，从而引发细胞死亡等多种病变。过氧化氢(H

本实验在正常对照组(NC)基础上，采用过氧化氢(H

MitoSox Red超氧化物指示剂是一种新型荧光染料，能够快速且选择性靶向活细胞中的线粒体。这些指示剂最大吸收/发射波长～396/610nm，可迅速被超氧化物氧化，但不被其他活性氧(ROS)和活性氮(RNS)氧化。通过观察线粒体超氧化物氧化MitoSOX试剂产生的明亮红色荧光，可以分析线粒体及细胞内超氧化物水平变化。

3.实验材料及设备

3.1.主要实验材料：ASTA、ASTA-C、ASTA-C-Pep、人皮肤成纤维细胞(HFF-1)、96孔板(Nest)、过氧化氢(Sigma-Aldrich)、FBS(Gibco)、青霉素-链霉素溶液(Biosharp)、MitoSOX Red线粒体超氧化物指示剂(Thermo Fisher)。

3.2.主要实验设备：超净台(Thermo Fisher Scientific)、倒置显微镜(BXP-1109)、二氧化碳培养箱(Thermo Fisher Scientific)、移液枪(Eppendorf ResearchPlus)、离心机(SC-D4)、高内涵细胞成像分析仪(Molecular Devices)。

4.实验方法

4.1.细胞接种：准备1块96孔板，将细胞接种于96孔板中(4×10

4.2.造模：孵育结束后，去培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次。正常对照组(NC)更换为新鲜培养基，模型对照组(MC)更换为新鲜培养基加H

表7：实验分组

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4.3.检测：

去除原培养液，用200μL PBS轻柔冲洗细胞一次或两次，加入不含胎牛的新鲜培养基100μL，加入MitoSox Red超氧化物指示剂，培养箱内孵育30min后，通过高内涵细胞成像分析仪分析线粒体超氧化物荧光强度。

4.4.数据分析：

过氧化氢刺激模型下，超氧化物生成抑制率(％)＝-{(模型样品组荧光值–模型对照组(MC)荧光值)/(模型对照组(MC)荧光值)}×100％。

4.5.统计学分析：

与NC对比，#p<0.05，##p<0.01，###p<0.001，####p<0.0001；与MC对比，*p<0.05，**p<0.01，***p<0.001，****p<0.0001；四次生物学重复(N＝4)。

5.实验结果

实验结果见表8以及附图4柱状图以及附图5的细胞荧光图。

表8：实验数据

与模型对照组(MC)相比，ASTA-C-Pep三元复合原料实验组能够显著抑制线粒体超氧化物水平，且抑制比例高于ASTA-C二元复合原料组以及单用虾青素实验组。证实ASTA-C-Pep三元复合原料较ASTA-C二元复合原料以及单用虾青素，更能有效对抗线粒体ROS及氧化应激损伤，保护线粒体功能。

实施例5

测定银耳多糖对ASTA-C-Pep三元复合原料的抗氧化稳定性的影响。

1.实验分组如下：以实施例4的ASTA+2xVC+5％ Pep为阴性对照溶液，分别添加不同浓度的银耳多糖，形成梯度的参测溶液，并加入丁基化羟基甲苯BHT作为阳性对照，进行抗氧化试验。

2.实验步骤：采用邻二氮菲Fe

3.实验结果分析

方法操作如下：取0.2ml 5×10

N＝[(A2-A3)/(A1-A3)]×100％

式中：N是清除率(％)；A1是不加H

分别检测0d、15d、30d、60d、120时溶液对活性自由基的清除率；

4.实验结果

表9：自由基清除率结果

经检测，经60℃恒温箱中加速氧化试验，添加0.1％～0.5％的银耳多糖即可保证ASTA-C-Pep三元复合原料的抗氧化性，又能够显著提高ASTA-C-Pep三元复合原料的稳定性。

实施例6

将ASTA-C-Pep三元复合原料和或银耳多糖，进行动物皮肤抗老化试验。

1.分组与造模：

首先将雌性小鼠适应性饲养7d，保证小鼠适应现环境后开始进行实验。将80只雌性小鼠按照随机数字表分组的方法分成8组，其中7组小鼠作为造模组，皮下注射D-半乳糖1.0g·kg

2.实验过程：选取小鼠背部中央位置4cm×7cm的区域，将各组涂抹在对应各组小鼠选取的皮肤区域表面，每只每天涂抹0.3g，24h后清洁皮肤并再次涂抹，连续涂抹21d，期间按需手工脱毛若干次。

鼠皮肤的表观特征观察比对各组小鼠用药部位皮肤的色泽、光滑程度、皱纹等表观特征并拍照记录。然后脱颈法处死实验小鼠，迅速剥下用药部位皮肤，去除皮下脂肪和其他结缔组织，铺平后用直径2cm打孔器在正中位置切取小鼠皮肤用于含水率测定，余下的皮肤于-20℃冷冻保存，用于测定HYP等成分。

3.实验分析

3.1皮肤含水率的测定

精确称量打孔器切取的皮肤湿重，随即将其放入烘箱中，于50℃烘干12

h，然后称取干重，计算出各实验组皮肤含水率。公式如下：

皮肤含水率＝(湿重-干重)/湿重×100％

3.2.皮肤羟脯氨酸(HYP)含量测定取涂药部位皮肤组织0.5g，用冰浴预冷的生理盐水进行漂洗，滤纸擦干，加入冰浴预冷的生理盐水，使用玻璃匀浆器研磨成浓度为10％的匀浆液。将得到的匀浆液在0℃下3 000r/min离心10min，取上清液。按照HYP试剂盒说明书所示方法，使用超微量微孔板分光光度计测定OD值，计算各实验组小鼠皮肤HYP含量。

3.3.皮肤透明质酸(HA)含量测定

取涂药部位皮肤组织0.5g，加入冰浴预冷的PBS缓冲溶液，使用玻璃匀浆器研磨成浓度为10％的匀浆液。将得到的匀浆液在0℃下1 000r/min离心4min，取上清液。按照HA试剂盒说明书所示方法，使用超微量微孔板分光光度计测定OD值，计算各实验组小鼠皮肤HA的含量。

3.4皮肤超氧化物歧化酶(SOD)活力的测定

取涂药部位皮肤组织0.5g，用冰浴预冷的生理盐水进行漂洗，之后加入冰浴预冷后的生理盐水，使用玻璃匀浆器研磨成浓度为10％的匀浆液。将得到的

匀浆液在0℃下3 000r/min离心10min，取上清液。按照SOD试剂盒说明书所示方法，使用超微量微孔板分光光度计测定OD值，计算各实验组小鼠皮肤SOD活力。

4.实验结果

从结果来看，ASTA-C-Pep三元复合原料组对于健康皮肤的含水量提高并没有显著效果，而对于皮肤屏障受损的敏感肌来讲，具有显著的促进含水量的效果，在添加银耳多糖之后，含水量能恢复到与健康皮肤相当的水平。对于HYP含量ASTA-C-Pep三元复合原料本身具有很高的提高效果，主要来源于维生素C的作用，而银耳多糖的加入对于HYP含量的影响并不大。对于HA含量，银耳多糖的加入相对于对照组能提高约4％～6％左右。而对于SOD活力来讲，虾青素和维生素C本身具有显著的提高作用，银耳多糖的加入并未检到进一步提高。

以上仅为本发明的有限几种优选实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。